2.暨南大学医学院组织学与胚胎学教研室;
3.暨南大学生命科学技术学院纳米生物技术实验室;
4.中山 大学附属孙逸仙纪念医院心内科心脏超声室
2.Department of Histology and Embryology,School of Medicine,Ji’nan University;
3. Department of Nato-biotechnology,School of Life Science, Ji’ nan University;
4.Department of Cardiology,The SUN Yat-sen Memorial Hospital Affiliated SUN Yat-sen University
缺氧诱导因子-1α(hypoxia inducible factor, HIF-1α)存在于缺氧条件下,在多种肿瘤细胞 中表达,能促进血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)的转录,加速肿 瘤血管形成,与肿瘤的生长、浸润密切相关[1]。纳 米金(gold nano particles,GNP)是金的微细颗粒,直 径多在1~100 nm之间,具有抗氧化性强、生物相 容性好,能与多种生物大分子结合无细胞毒性, 被广泛用于药物的载体[2]。既往实验证实,GNP能 促进微血管外壁的周细胞表型成熟,使肿瘤血管 壁结构趋于正常化[3]。它的作用能否改善肿瘤内缺 氧微环境、影响HIF-1α表达,目前还不甚了解。 为此,我们选用血管丰富的裸鼠肝癌动物模型, 观察用GNP处理后,肿瘤组织中HIF-1α mRNA、 VEGF mRNA的表达及肿瘤血管形态变化,探讨 GNP的抗肿瘤作用及可能机制。 1 材料与方法 1.1 实验动物及主要试剂
Balb/c裸小鼠(nu/nu)14只,6周龄,体质量 为15~17 g,SPF级,由暨南大学实验动物中心提 供。肝癌H22细胞株购自中山大学医学院细胞冻 藏中心。HIF-1α mRNA原位分子杂交试剂盒和 VEGFmRNA原位分子杂交试剂盒(MK1142-)购自 武汉博士德公司。HIF-1α靶基因的mRNA序列为: 5'-GGAAGTGGCAACTGACAAGCTCATAA-3'; 5'-ACACACTGTGTCCAGTTAGTTCAAACTGAG -3';5'-AGCATGATAATATTCATAAATTGAGCGG CC-3'。VEGF靶基因mRNA序列为:5'-ACCTCCA CCATGCCAAGTGGTCCCAGGCTGCACC-3';5'- ATTGAGACCCTGGTGGACATCTTCCAGGAGTA CCC-3';5'-ATCACCATGCAGATTATGCGGATCA AACCTCACCA-3'。探针为地高辛标记。DAB酶底 物显色试剂盒,购自北京中杉金桥生物技术公司。 GNP合成原料氯金酸、枸橼酸钠购于国药集团化学 试剂有限公司。采用氯金酸还原法自行合成GNP。 1.2 纳米金的制备和表征
用改进的氯金酸柠檬酸三钠还原法制备 GNP,操作方法参照文献[4]。制备GNP原液粒径为 25 nm左右,用透射电子显微镜表征及紫外可见分 光光度计(UV-Vis)鉴定后,取部分原液稀释至浓度 为500 nmol/L,置4℃冰箱保存。 1.3 动物模型建立
6周龄Balb/c裸鼠(nu/nu)14只,称重。将H22肝 癌细胞1×106个(0.2 ml)种植到小鼠的右腋皮下。 移开针头后,按压注射部位约30 s,以防细胞稀释 液从针孔渗出。肿瘤最长径形成约7~8 mm大小, 随机分为两组。GNP组:从肿瘤周围及瘤内注入 GNP(浓度为500 nmol/L)溶液0.2 ml;对照组:用 0.2 ml的0.9%氯化钠溶液替代,其余处理方法同实 验组。各组每天用药1次,连续7 d。 1.4 超声观察肿瘤血管形态
超声多谱勒血流测定仪观察每只裸鼠用药7 d 后的肿瘤血管形态,肿瘤血管通透性。测量肿瘤 血管直径;检测肿瘤区血流频率和阻抗系数,计 算肿瘤内血液灌注量。 1.5 肿瘤体积检测
处死裸鼠,收集肿瘤标本。测量肿瘤长径和 短径,应用公式:长径×短径×短径×0.52,计算肿 瘤体积。肿瘤称重,10%福尔马林溶液固定标本。 1.6 肿瘤组织中HIF-1α mRNA和VEGF mRNA测定
HIF-1α mRNA和VEGF mRNA测定采用原位 杂交方法。实验步骤如下:(1)取已石蜡包埋的 肿瘤标本。常规制备5~6 μm厚连续切片多张,切 片脱蜡至水洗,3%H2O2甲醇液室温下处理10 min 后,蒸馏水冲洗。(2)室温下,滴加3%胃蛋白酶 消化20 min后,取pH值为7.2的PBS液洗3次,每次 5 min。(3)滴加杂交液孵育,37℃过夜。(4) 滴加封闭液,室温下20 min。滴兔抗地高辛,37℃ 孵育60 min,0.5 mol/L PBS缓冲液洗3次,每次2 min。(5)滴加生物素化羊抗兔IgG,37℃孵育30 min,0.5 mol/L PBS液洗4次,每次5 min。DAB显 色20 min,充分水洗。脱水透明,中性树胶封固。 以细胞中染成棕黄色颗粒为阳性细胞。每张切片 中选取着色最丰富的5个区域,200倍显微镜下 计数阳性标记的细胞数,取平均值,计算HIF-1α mRNA和VEGF mRNA阳性表达的百分比。 1.7 统计学方法
采用SPSS13.0统计软件进行统计分析,以均 数±标准差(x±s)表示,各组间均数比较采用单因素 方差分析,组间两两比较采用方差分析的SNK-q检 验,以P<0.05表示差异有统计学意义。 2 结果 2.1 GNP的鉴定及透射电子显微镜表征
透射电子显微镜观察下GNP颗粒呈圆形、分 散,粒径稳定,未见到明显团聚,颗粒长径大小为25 nm左右;UV-Vis吸收光谱显示GNP的最大吸 收峰在520 nm处,见图1。
肿瘤体积测量结果显示,对照组肿瘤体积为 (1.573±0.247)cm3,实验组为(0.935±0.129)cm3,两 组比较其差异有统计学意义(P<0.05)。 2.3 GNP对肿瘤血管形态的影响
超声多谱勒显示:实验组肿瘤血流分布均 匀,血管形态趋于正常。实验组与对照组相比 肿瘤血管直径[(0.6397±0.1548)mm vs. (1.1000± 0.3247)mm]及肿瘤血液灌注量[(1.171±0.241)cm3 vs. (2.357±0.408)cm3]均有所下降,两者之间差异有统 计学意义(P<0.05),见图2。
mRNA表达的影响 原位杂交检测裸鼠肝癌组织中HIF-1α mRNA 和VEGF mRNA表达,其结果显示,GNP组中 HIF-1α mRNA(15.3±7.4)和VEGF mRNA (23.7±9.5) 表达较对照组HIF-1α mRNA(67.2±13.1)和VEGF mRNA(70.3±14.6)均有所下降,两者之间差异有统 计学意义(P<0.05),见图3。
HIF-1α是机体在缺氧条件下诱导的一种核转 录因子,它在细胞缺氧信号途径中处于核心位 置。HIF-1α高表达能增强细胞在缺氧环境下的生 存能力,使肿瘤细胞分泌更多VEGF,促进血管 生长和肿瘤细胞恶性转化,与肿瘤不良预后密 切相关[5]。在本研究中,我们发现GNP组HIF-1α mRNA、VEGF mRNA表达量较对照组明显下降 (P<0.05),并且肿瘤体积亦较对照组亦明显 缩小(P<0.05)。这说明GNP能通过抑制HIF-1α mRNA、VEGF mRNA表达,抗裸鼠肝癌生长。
既往细胞实验证实GNP能与VEGF结合,使 VEGF促血管生成作用失效,抑制内皮细胞增殖 及血管生成[6]。在本实验中,GNP组裸鼠HIF-1α mRNA表达低于对照组;GNP组裸鼠肝癌血管直 径及血液灌注量分别为(0.6397±0.2548)mm、(1.671 ±0.741)mm3;亦较对照组明显减少(P<0.05)。 GNP能使裸鼠肝癌血管分布减少,降低肿瘤内滋 养血管直径,减少肿瘤组织内异常血流灌注。超 声观察到此时裸鼠肝癌血管形态较均匀,趋于正 常血管。说明GNP可以使裸鼠肝癌血管正常化, 改变肿瘤内的代谢微环境。由于肿瘤的特性是表 现为肿瘤组织内血流分布不均匀,无效血液循环 增加,肿瘤内部呈现渗透压高、缺氧的代谢微环 境,刺激HIF-1α高表达[1, 7]。GNP通过对裸鼠肝癌血 管的影响,改善肿瘤内部灌注压高、缺氧的代谢微 环境,达到抑制HIF-1α mRNA高表达状态,发挥抗 裸鼠肝癌生长作用。这与既往实验证实GNP能促进 肿瘤血管外壁周细胞表型成熟,使周细胞间连接相 对致密,减少肿瘤血管壁的渗漏性,抑制肿瘤细胞 沿血管播散和转移的研究相一致[3, 8]。
本实验说明,纳米金抗裸鼠肝癌生长不仅能 通过抑制肿瘤血管生成来实现,也可以是由于正 常化肿瘤血管、改善肿瘤内部缺氧的代谢微环 境,延缓肿瘤细胞的恶性转化来实现。GNP的这 种生物学特性能否增敏放、化疗抗恶性肿瘤生长 作用,还有待课题研究的进一步深入阐明。
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