文章信息
- 刘洁,彭微,吴稚晖,刘怀,宋海鹏,邓征浩,徐筱红. 2015.
- LIU Jie, PENG Wei, WU Zhihui, LIU Huai, SONG Haipeng, DENG Zhenghao, XU Xiaohong. 2015.
- 结肠癌患者手术前后血浆miR-21表达水平变化及其临床意义
- Plasma miR-21 Expression in Colon Cancer Patients Before and After Operation and Its Clinical Significance
- 肿瘤防治研究, 2015, 42(08): 794-796
- Cancer Research on Prevention and Treatment, 2015, 42(08): 794-796
- http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2015.08.009
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文章历史
- 收稿日期: 2014-09-09
- 修回日期: 2015-04-18
2. 412000 株洲,株洲市中心医院心胸外科;
3. 410000 长沙,中南大学湘雅医学院病理学系
2. Department of Cardiothoracic Surgery, The Central Hospital of Zhuzhou City, Zhuzhou 412000, China;
3. Department of Pathology, Xiangya School of Medicine, Central South University, Changsha 410000, China
结肠癌是消化道最常见的恶性肿瘤之一,在我国其发病率与死亡率有逐年上升的趋势,严重危害人们的健康与生命。微小RNA(microRNAs,miRNAs)是内源性的非编码小RNA,对基因表达进行转录后的负向调控,大量研究证明miRNA与多种肿瘤的发生发展存在密切关系。miR-21在多种肿瘤中的表达均出现显著异常,揭示它作为一个致癌miRNA,在肿瘤的发生和发展中起着重要的作用。多项研究表明miR-21在大肠癌组织中表达上调,恶性程度越高的癌组织中表达量越高。孙建斌等[1]研究发现大肠癌组与良性大肠疾病组和健康对照组血浆miR-21表达差异具有统计学意义。国外多项研究提示[2, 3]结肠癌患者组织中miR-21高表达,与临床分期、淋巴结转移及远处转移相关。本实验用实时荧光定量方法对结肠癌患者术前一周、术后一周、术后一月血浆中miR-21表达进行动态检测,并观察其表达与肿瘤的分化程度、TNM分期、淋巴结转移和远处转移是否有关系。本研究旨在揭示结肠癌患者血浆中miR-21的表达情况,提示其检测可成为有效的辅助诊断结肠癌及判断其预后的分子标志。
1 资料与方法 1.1 资料收集株洲市中心医院和湘雅医院经病理诊断为结肠癌的40例患者临床资料,术前均未接受过放化疗及细胞分子靶向治疗。其中男23例、女17例;年龄30~80岁(平均年龄56.14岁)。高分化腺癌10例、中分化16例、低分化14例;TNM分期:Ⅰ期6例、Ⅱ期18例、Ⅲ期11例、Ⅳ期5例;有淋巴结转移24例、无淋巴结转移16例;远处转移5例、无远处转移35例。另采集20例健康志愿者外周血标本作为阴性对照。血液标本的采集均获得患者及健康志愿者的知情同意。
1.2 方法 1.2.1 血浆标本的处理抽取20例健康志愿者和40例结肠癌患者手术前一周清晨空腹时外周静脉血5 ml,手术后一周和一月后再次抽取,抽取后加入EDTA抗凝剂,在常温下4 h内处理。血标本在4℃下1 200 g离心10 min,用1.5 ml无核糖核酸酶(RNa酶)的离心管分装血浆和血细胞,-80℃冰箱保存备用。
1.2.2 血浆总RNA的提取每份血标本取400 μl血浆移至另一干净的1.5 ml EP管中,提取RNA前再次离心,离心条件:1 200 g,4℃ 10 min。收集血浆至另一新的EP管中。加入TRIzol试剂,与管中血浆的比例为1:0.8(V:V)。充分混匀,放置冰上15 min,1 200 g,4℃离心10 min,取上清液。用核酸蛋白仪测定RNA的浓度和纯度。
1.2.3 血浆miR-21检测检测方法为荧光定量PCR法,利用两步法对miR-21进行检测,按照上海吉玛制药技术有限公司Hairpin-itTM miRNAs qPCRQuantitationKit试剂盒说明进行反转录反应。荧光定量PCR,对目的miRNAs使用一般通用的反转录条件进行转录。95℃ 30 s、95℃ 10 s、55℃ 15 s、72℃ 20 s ,循环40次,所有标本检测3次,扩增U6作为内参基因。
1.3 统计学方法采用SPSS15.0统计软件进行处理。用2-ΔΔCt表示miR-21的表达量,表达水平用(x±s)表示。术前、术后一周、术后一月miR-21的表达水平采用配对t检验,miR-21与结肠癌临床病理特征之间的相关性采用独立样本t检验,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 术前miR-21在结肠癌患者与健康对照组血浆中的表达比较结果qRT-PCR检测结果显示40例结肠癌患者术前血浆中miR-21的表达水平显著高于对照组,差异有统计学意义(P<0.05),见表 1。
2.2 miR-21在40例结肠癌手术患者血浆中的动态变化qRT-PCR检测miR-21在40例结肠癌患者手术前一周、手术后一周和术后一月血浆中的表达,结果显示与术前相比,术后一周和一月血浆中miR-21的表达明显降低,差异具有统计学意义(P<0.05),见表 2。miR-21的下降水平以手术后第一周最为明显,术后一周至术后一月下降较缓慢。
2.3 miR-21的表达与临床病理参数的关系。qRT-PCR检测miR-21在40例结肠癌患者手术前一周的表达与肿瘤的分化程度、临床分期、淋巴结转移及远处转移有关,而与年龄、性别无相关性,见表 3。
3 讨论微小RNA(miRNA)是一类进化上保守、内源性非蛋白质编码的RNA分子,长约17~25个核苷酸,能够识别特定的目标mRNA,并在转录后水平负调控基因[4]。近年来miRNA的研究已成为肿瘤学诊断和治疗领域的新热点。miR-21基因是最早在人类基因组中检测到的miRNA基因之一,其在肺癌、乳腺癌、胶质母细胞瘤、胃癌、胰腺癌、胰腺神经内分泌肿瘤、肝癌、胆管癌、结肠癌、前列腺癌中均呈过表达[5, 6, 7, 8],是实体肿瘤中最常见的过高表达miRNA之一,在肿瘤的发生发展中可能发挥癌基因的作用[9]。
外周血循环肿瘤标志物的检测具有微创伤、可重复、可在同一时间点进行多项指标检测等优点,是肿瘤诊断和随访的理想方法。目前研究已证实miR-21不仅在结肠癌组织呈高表达,在患者血浆中也呈高表达,并与临床分期和预后密切相关[1, 10, 11]。研究发现血浆miR-21在大肠癌诊断的敏感度和特异性分别为84.5%和74.4%[12],因此血浆miR-21可能作为一个潜在的广谱的结肠癌检测的生物标志物,成为结肠癌诊断的一种新方法。
本研究对结肠癌患者血浆中miR-21表达情况进行术前和术后动态检测,结果发现在结肠癌患者手术后血浆中miR-21的表达明显降低,差异有统计学意义。即手术去除肿瘤后,血浆中miR-21水平迅速下降。说明miR-21与肿瘤密切相关,它能促进肿瘤的发生、增殖。
综上所述,qRT-PCR检测结肠癌患者血浆中miR-21的表达对监测其发展、判断其分期、手术效果、复发和转移具有重要作用。血浆miR-21表达可作为结肠癌潜在的生物标志物,有效的辅助诊断结肠癌及判断其预后。
[1] | Sun JB, Xia L. Detection of plasma circulating miR-21 of colorectal carcinoma patients by a quantitative real-time PCR[J]. Lin Chuang Xue Ye Xue Za Zhi (Shu Xue Yu Jian Yan Ban), 2011, 24(4): 444-7. [孙建斌, 夏琳. 实时荧光定量检测大肠癌患者血浆miR-21的表达[J]. 临床血液学杂志(输血与检验版), 2011, 24(4): 444-7.] |
[2] | Slaby O, Svoboda M, Fabian P, et al. Altered expression of miR-21, miR-31, miR-143 and miR-145 is related to clinicopathologic features of colorectal cancer[J]. Oncology, 2007, 72(5-6): 397-402. |
[3] | Faltejskova P, Besse A, Sevcikova S, et al. Clinical correlations of miR-21 expression in colorectal cancer patients and effects of its inhibition on DLD1 colon cancer cells[J]. Int J Colorectal Dis, 2012, 27(11): 1401-8. |
[4] | Scott GK, Goga A, Bhaumik D, et al. Coordinate suppression of ERBB2 and ERBB3 by enforced expression of micro-RNA miR-125b[J]. J Biol Chem, 2007, 282(2): 1479-86. |
[5] | Chan SH, Wu CW, Li AF, et al. miR-21 microRNA expression in human gastric carcinomas and its clinical association[J]. Anticancer Res, 2008, 28(2A): 907-11. |
[6] | Lu X, Su J, Gao W, et al. Expression of microRNA in NSCLC with drug-resistant cell line A549 /DDP[J]. Zhonghua Zhong Liu Fang Zhi Za Zhi, 2010, 17(9): 659-63. [陆晓, 孙婧, 高雯, 等. 非小细胞肺癌耐药细胞株A549/DDP中microRNA表达的初步研究[J]. 中华肿瘤防治杂志, 2010, 17(9): 659-63.] |
[7] | Selcuklu SD, Donoghue MT, Spillane C. miR-21 as a key regulator of oncogenic processes[J]. Biochem Soc Trans, 2009, 37(4): 918-25. |
[8] | Zhong Q, Fang JG, Huang ZG, et al. Expression of miRNA in laryngeal squamous cell carcinoma tissues[J]. Zhonghua Zhong Liu Fang Zhi Za Zhi, 2010, 17(14): 1073-6. [钟琦, 房居高, 黄志刚, 等. 喉鳞状细胞癌组织miRNA表达的初步研究[J]. 中华肿瘤防治杂志, 2010, 17(14): 1073-6.] |
[9] | Liang Y, Wu JX. Progress of miR-21 and tumor[J]. Zhonghua Zhong Liu Fang Zhi Za Zhi, 2012, 19(12): 949-52. [梁燕, 吴建新. miR-21与肿瘤研究进展[J]. 中华肿瘤防治杂志, 2012, 19(12): 949-52.] |
[10] | Basati G, Emami Razavi A, Abdi S, et al. Elevated level of microRNA-21 in the serum of patients with colorectal cancer[J]. Med Oncol, 2014, 31(10): 205. |
[11] | Masuda S, Izpisua Belmonte JC. Serum miR-21 as a diagnostic and prognostic biomarker in colorectal cancer[J]. J Natl Cancer Inst, 2014, 106(3): djt457. |
[12] | Wang B, Zhang Q. The expression and clinical significance of circulating microRNA-21 in serum of five solid tumors[J]. J Cancer Res Clin Oncol, 2012, 138(10): 1659-66. |