肿瘤防治研究  2015, Vol. 42 Issue (4): 280-284
本刊由国家卫生和计划生育委员会主管,湖北省卫生厅、中国抗癌协会、湖北省肿瘤医院主办。
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文章信息

熊羽,樊青霞,赵国强. 2015
XIONG Yu, FAN Qingxia, ZHAO Guoqiang. 2015
索拉非尼对食管癌EC9706细胞的生长抑制作用
Inhibitory Effect of Sorafenib on Growth of Human Esophageal Cancer Cells EC9706
肿瘤防治研究, 2015, 42(04): 324-327
Cancer Research on Prevention and Treatment, 2015, 42(04): 324-327
http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2015.04.002

文章历史

收稿日期:2014-04-21
修回日期:2014-07-22
索拉非尼对食管癌EC9706细胞的生长抑制作用
熊羽1, 樊青霞1, 赵国强2    
1. 450052 郑州,郑州大学附属第一医院肿瘤科;
2. 450001 郑州,郑州大学基础医学院微生物免疫研究室
摘要目的 探讨索拉非尼(sorafenib)体外对EC9706细胞生长抑制作用及其机制。方法 qRTPCR检测sorafenib作用后MMP-2、MMP-9、TIMP1、AKT和Bcl-2 mRNA的表达;Western blot检测sorafenib作用后AKT、p-AKT、Bcl-2、MMP-2和TIMP1蛋白表达水平的变化;Hoechst/PI 染色荧光显微镜观察sorafenib诱导的细胞凋亡/坏死;细胞划痕实验观察sorafenib对EC9706细胞的迁移抑制作用。结果 与对照组相比,qRT-PCR显示sorafenib下调MMP-2、MMP-9、AKT、Bcl-2 mRNA表达,上调TIMP1 mRNA 表达(P<0.05);Western blot显示sorafenib降低MMP-2、AKT、p-AKT、Bcl-2蛋白的表达水平,上调TIMP1蛋白表达水平(P<0.05);荧光显微镜观察发现sorafenib诱导红染细胞增加(P<0.05);细胞划痕实验发现sorafenib作用后划痕明显变宽,并且具有浓度依赖性(P<0.05)。结论 索拉非尼能够上调TIMP1表达水平、下调MMP-2、MMP-9、AKT、Bcl-2表达水平,可以抑制食管鳞癌EC9706细胞的迁移、促进凋亡坏死,这些可能是其产生抗肿瘤作用的机制之一。
关键词索拉非尼     EC9706细胞     细胞生长抑制     MMP-2/MMP-9/TIMP1     AKT/Bcl-2    
Inhibitory Effect of Sorafenib on Growth of Human Esophageal Cancer Cells EC9706
XIONG Yu1, FAN Qingxia1, ZHAO Guoqiang2    
1. Department of Oncology, The First Hospital Affiliated to Zhengzhou University, Zhengzhou 450052, China;
2. Department of Microbiology and Immunology, School of Basic Medical Sciences, Zhengzhou University, Zhengzhou 450001, China
AbstractObjective To investigate the inhibitory effect of sorafenib on the growth of esophageal cancer cells EC9706 in vitro and its mechanism. Methods Effect of sorafenib on the expression of MMP-2, MMP-9, TIMP1, AKT and Bcl-2 were detected by qRT-PCR. Effect of sorafenib on the expression of AKT, p-AKT, Bcl-2, MMP-2 and TIMP1 were detected by Western blot. Cell apoptosis/necrosis induced by sorafenib were observed by Hoechst/PI staining. The inhibitory effect of sorafenib on EC9706 cells migration was observed by cell scratch test. Results qRT-PCR data showed downregulation of MMP-2, MMP-9, AKT, Bcl-2 and upregulation of TIMP1 mRNA, compared with the control group(P<0.05); furthermore, Western blot analysis revealed the expression of MMP-2, AKT, p-AKT, Bcl-2 proteins were downregulated and TIMP1 protein expression was upregulated in the sorafenib groups compared with the control group(P<0.05).Sorafenib was found not only to inhibit the migration of EC9706 cells in vitro by cell scratch test, but also to promote cells apoptosis in vitro by Hoechst/PI apoptosis/necrosis detection(P<0.05). Conclusion Sorafenib could upregulate the expression of TIMP1, downregulate the expression of MMP-9, AKT, MMP-2 and Bcl-2,and inhibit the migration and promote apoptosis/necrosis of esophageal cancer cells EC9706. These may be its anticancer mechanism.
Key words: Sorafenib     EC9706     Cell growth inhibition     MMP-2/MMP-9/TIMP1     AKT/Bcl-2    
0 引言

食管癌是最常见的恶性肿瘤之一,全球年新发病约为48.2万例,年死亡约40.7万例,中国食管癌粗发病率和粗死亡率均居世界第1位,在我国恶性肿瘤中,食管癌发病率居第4位、死亡率居第5位[1, 2]。我国食管癌一直以食管鳞癌为主,食管腺癌的发病率未见明显的增长[3]。在治疗方面,早中期食管癌普遍采用手术或放疗为主、化疗为辅的治疗模式,晚期则采用放、化疗联合治疗模式。目前药物治疗仍是晚期食管癌治疗的重要手段之一,但总的疗效并不令人满意[4]

食管癌的靶向治疗是当前研究热点,索拉非尼(sorafenib)作为一种小分子多激酶抑制剂,能有效抑制Raft丝裂原活化的细胞外信号调节激酶的激酶(MEK)/细胞外信号调节激酶(ERK)信号通路[5]。2005年,sorafenib被美国食品和药品管理局(FDA)批准用于治疗晚期肾细胞癌。2007年,美国临床肿瘤学会年会公布的研究结果显示,sorafenib可有效延长晚期肝细胞癌患者的生存时间[6]。临床前及临床研究显示,索拉非尼具有明显的抗肿瘤效应,Ⅰ、Ⅱ期临床试验发现索拉非尼在肺癌、恶性黑色素瘤等肿瘤中具有抗肿瘤效应[7, 8]。目前,关于sorafenib对食管癌作用尚未报道,本研究旨在初步探讨sorafenib对人食管鳞癌EC9706细胞株的生长抑制作用及其机制。1 材料与方法1.1 材料

人食管鳞癌EC9706细胞由郑州大学基础医学院重点实验室馈赠。索拉非尼购自德国Bayer公司,RPMI 1640培养液、2.5 g/L胰蛋白酶均购自北京Solarbio公司,胎牛血清购自杭州四季青公司,二甲基亚砜、Hoechst/PI 双染试剂盒购自南京凯基生物公司,反转录试剂盒购自上海诺论生物公司,引物购自上海生工生物工程有限公司,抗体购自美国Santa Cruz公司。1.2 方法1.2.1 细胞培养

常规培养EC9706细胞,用含体积分数10%胎牛血清的RPMI 1640培养液(内含青霉素100 ku/L、 链霉素100 mg/L)于37℃ CO2培养箱中培养,用0.25%胰酶消化传代,每2天换液传代1次。1.2.2 细胞划痕实验

取对数生长期细胞,胰酶消化后制成单细胞悬液,细胞密度为5×105个/孔,接种于6孔板中,培养24 h贴壁后,用10 μl标准无菌枪头垂直于6孔板底面划痕,以sorafenib终浓度3、6 μmol/L加药分组,对照组不加药,用含体积分数为10%胎牛血清的RPMI 1640培养液培养,作用24 h后于倒置显微镜下观察药物作用后细胞形态变化、取样,拍照,测量细胞向划痕区迁移的相对距离,实验重复5次。 1.2.3 Hoechst/PI凋亡检测

实验组按sorafenib终浓度3、6 μmol/L加药分组,对照组不加药。细胞培养48 h后,吸除培养液,胰蛋白酶消化,悬液转移至离心管离心后,去上清液,经吹打、收集、离心,PBS洗后,将1×106个细胞悬浮于1 ml培养液,加入10 μl Hoechst染液混匀,37℃孵育10 min后,4℃离心5 min后去上清液,用1 ml Buffer A重悬细胞,加5 μl PI染液后室温暗室孵育15 min。荧光显微镜观察细胞形态变化、取样、拍照,实验重复3次。 1.2.4 q RT- PCR检测5种基因mRNA的表达水平

实时荧光定量PCR:实验组按6 μmol/L加药,对照组不加药。细胞培养48 h后,收集细胞,按 Trizol试剂盒说明提取总RNA,电泳鉴定、定量,反转录合成cDNA。PCR反应前3~15个循环的荧光信号作为荧光本底信号,调节基线至适宜处,各荧光曲线与基线交叉点的循环数即为Ct值。根据公式ΔCt=Ct目的基因-Ctβ-actin和ΔΔCt=2-ΔΔCt,计算检测基因mRNA相对表达量,每组重复3次并取平均值。所检测目的基因AKT、Bcl-2、MMP-2、MMP-9、TIMP1和β-actin的相关PCR引物序列,见表 1

表 1 qRT-PCR检测所需的引物序列Table 1 Primer sequences required for qRT-PCR
1.2.5 Western blot检测EC9706细胞5种蛋白的表达

实验组按6 μmol/L加药,对照组不加药。细胞培养48 h后,用预冷的PBS冲洗3次后,冰上裂解15 min,4℃、13 000 g 离心30 min;将上清液转移至1.5 ml离心管,加入5×SDS smple buffer混匀,蛋白变性,分装,置于-80℃保存。测定样品蛋白浓度:将蛋白样品加入10% SDS-聚丙烯凝胶中电泳分离,电泳完毕后,切胶,冰上转膜;经5%脱脂奶粉封闭,分别加入AKT(1:1 000),p-AKT(1:1 000),Bcl-2(1:1 000),MMP-2(1:300),TIMPl(1:300),β-actin(1:1 000)后4℃孵育过夜,再加入二抗(1:5 000)后常温孵育1 h,最后暗室曝光,拍照。1.3 统计学方法

 采用SPSS 17.0软件进行统计学分析。各实验至少重复3次,数据资料用x±s表示,两样本采用t检验,经方差齐性检验,多组均数比较采用单因素方差分析,组间比较用LSD-t法,P<0.05为差异有统计学意义。2 结果2.1 sorafenib对EC9706细胞迁移的影响

通过细胞划痕实验发现,培养24 h后,对照组细胞迁移入划痕区的相对距离较3 μmol/L组和6 μmol/L组细胞明显减少12.5 μm和15.4 μm,差异具有统计学意义(P<0.05),见图 1

A-C: effects of sorafenib on the migration of EC9706 cells detected by cell wound healing assay; A: control group;B: 3μmol/L group; C: 6μmol/L group; D: relative average distance of cell migration after cultured for 24 hours detected by cell wound healing assay; *: P<0.05, compared with the control group图 1 划痕实验检测sorafenib对EC9706细胞迁移的作用(×100)Figure 1 Effect of sorafenib on the migration of EC9706 cells detected by cell wound healing assay(×100)
2.2 Hoechst/PI 染色观察sorafenib对EC9706细胞凋亡/坏死的影响

sorafenib作用EC9706细胞48 h后,同对照组相比,实验组(3 μmol/L组和6 μmol/L组)红染细胞增多,且随着药物浓度的增加,凋亡细胞明显增加(P<0.05),见图 2

A: control group; B: 3μmol/L sorafenib group; C: 6μmol/L sorafenib group图 2 Hoechst/PI 染色阳性细胞(×100)Figure 2 Positive staining cells detected by Hoechst/PI(×100)
2.3 sorafenib对EC9706细胞5种基因mRNA表达水平的影响

结果显示,与对照组相比,加药组(6 μmol/L组)AKT、Bcl-2、MMP-2、MMP-9表达下调,TIMP1表达上调,见表 2

表 2 Sorafenib对EC9706细胞5种基因mRNA表达水平的影响(n=5)Table 2 Effect of sorafenib on the expression of five gene mRNAs in EC9706 cells (n=5)
2.4 sorafenib对EC9706细胞5种蛋白水平表达的影响

同对照组相比,6 μmol/L组sorafenib能够明显降低AKT、p-AKT、MMP-2、Bcl-2蛋白的表达水平,提高TIMP1蛋白表达水平,见图 3A3B

1: control group; 2: drug group 图 3 sorafenib对EC9706细胞5种蛋白水平表达的影响(n=5)Figure 3 Effect of sorafenib on the expression of five proteins in EC9706 cells (n=5)
3 讨论

已有研究报道 ,单靶点EGFR TKI如gefitinib、erlotinib用于二线治疗晚期食管癌,效果不够理想[9, 10]。食管癌发病机制复杂,当抑制血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)旁路时,能够使绝大多数肿瘤临床症状明显改善[11]。因此多靶点可能比单靶点治疗食管癌更有效。

sorafenib作为一种小分子多激酶抑制剂,它不仅能够有效抑制丝氨酸激酶、苏氨酸激酶的活性,还可以抑制血管内皮生长因子受体,血小板衍生生长因子受体以及c-Kit、Flt-3、RET等受体,从而抑制多条下游信号通路的激活[12]。血管内皮生长因子(VEGF)和金属基质蛋白酶(MMPs)相互影响、相互作用,能够共同促进肿瘤细胞浸润及转移[13]。基质金属蛋白酶抑制剂(TIMPs)是MMPs的特异性组织抑制物,TIMP-1低浓度表达与肿瘤的远处转移相关[14]。PI3K-AKT信号通路在肿瘤发生、发展中起着重要作用,当其发生突变时,调控基因表达,从而诱导肿瘤的生成[15]。Bcl-2 蛋白是一种能够抑制细胞凋亡的抗凋亡蛋白,该蛋白表达上调与不良预后有着直接关联,表达下调能够增强肿瘤对凋亡的敏感度。有研究表明,PI3K-AKT信号通路可以通过上调基质金属蛋白酶(MMP)的表达促进肿瘤血管生成等途径增强肿瘤细胞的侵袭[16]。sorafenib由于能够抑制血管内皮生长因子受体的表达,进而阻断 PI3KAKT通路,显示出抗肿瘤活性。

在本实验中,s o r af en ib能够抑制食管鳞癌EC9706细胞的迁移,促进其坏死凋亡,同时降低MMP-2、MMP-9、AKT、p-AKT、Bcl-2的表达水平,上调TIMP1表达水平,提示sorafenib可能是通过抑制VEGF来抑制PI3K-AKT信号通路而下调 Bcl-2及MPPs的表达,这些方式可能是其抗肿瘤的机制之一。由于sorafenib为多靶点的抗肿瘤药物,其抗肿瘤机制复杂,仍需今后进一步研究与探讨。

参考文献
[1] Jemal A, Bray F, Center MM, et al. Global cancer statistics[J]. CA Cancer J Clin, 2011, 61(2): 69-90.
[2] Zhang SW, Zhang M, Li GL, et al. An analysis of incidence and mortality of esophageal cancer in China, 2003-2007[J].Zhongguo Zhong Liu, 2012, 21(4): 241-7.[张思维, 张敏, 李光琳, 等. 2003-2007年中国食管癌发病与死亡分析[J]. 中国肿瘤, 2012, 21(4): 241-7.]
[3] He J, Shao K. The epidemiology, current status of management, challenge and future strategy for esophageal cancer in China[J].Zhongguo Ai Zheng Za Zhi, 2011, 21(7): 501-4.[赫捷, 邵康. 中国食管癌流行病学现状、诊疗现状及未来对策[J]. 中国癌症杂志, 2011, 21(7): 501-4.]
[4] Cheng X, Chen SY, Liu FG. Advances in chemotherapy of esophageal cancer[J]. Ai Zheng Jin Zhan, 2013, 11(5): 425-30. [程欣, 陈思禹, 刘福国. 食管癌化疗进展[J]. 癌症进展, 2013, 11(5): 425-30.]
[5] Hahn O, Stadler W. Sorafenib[J]. Curr Opin Oncol, 2006, 18(6):615-21.
[6] Llovet JM, Ricci S, Mazzaferro V, et a1. Sorafenib in advanced hepatocellular carcinoma[J]. N Engl J Med, 2008, 359(4): 378-90.
[7] Sharma N, Pennell N, Nickolich M, et a1. Phase Ⅱ trial of Sor af enib in conjunction with chemother apy and as maintenance therapy in extensive-stage small cell lung cancer[J]. Invest New Drugs, 2014, 32(2): 362-8.
[8] Monk P, Lam E, Mortazavi A, et al. A phase Ⅰ study of high-dose interleukin-2 with sorafenib in patients with metastatic renal cell carcinoma and melanoma[J]. J Immunother, 2014, 37(3): 180-6.
[9] Ferry DR, Anderson M, Beddard K, et al. A phase Ⅱ study of gefitinib monotherapy in advanced esophageal adenocarcinoma: evidence of gene expression, cellular, and clinical response[J].Clin Cancer Res, 2007, 13(19): 5869-75.
[10] Ilson DH, Kelsen D, Shah M, et al. A phase 2 trial of erlotinib in patients with pr eviously tr eated squamous cell and adenocarcinoma of the esophagus[J]. Cancer, 2011, 117(7): 1409-14.
[11] Hasumi Y, Klosowska-Wardega A, Furuhashi M, et al. Identification of a subset of pericytes that respond to combination therapy targeting PDGF and VEGF signaling[J]. Int J Cancer, 2007, 121(12): 2606-14.
[12] Kim A, Balis FM, Widemann BC. Sorafenib and sunitinib[J]. Oncologist, 2009, 14(8): 800-5.
[13] Shi YL, Xu T, Li LP, et al. Over-expression of VEGF and MMP-9 in residual tumor cells of hepatocellular carcinoma after embolization with lipidol[J]. J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci, 2013, 33(1): 90-5.
[14] O'Grady A, Dunne C, O'Kelly P, et al. Differential expression of matrix metalloproteinase (MMP)-2,MMP-9and tissue inhibitor of metalloproteinase (TIMP)-l and TIMP-2 in non-melanoma skin cancer: implications for tumour progression[J]. Histopathology, 2007, 51(6): 793-804.
[15] Villegas-Comonfort S, Castillo-Sanchez R, Serna-Marquez N, et a1. Arachidonic acid promotes migration and invasion through a PI3K/Akt-dependent pathway in MDA-MB-231 breast cancer cells[J]. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids, 2014, 90(5): 169-77.
[16] Chetty C, Lakka SS, Bhoopathi P, et al. MMP-2 alters VEGF expression via alphaVbeta3 integrin-mediated PI3K/AKT signaling in A549 lung cancer cells[J]. Int J Cancer, 2010, 127(5): 1081-95.