肿瘤防治研究  2014, Vol. 41 Issue (9): 1040-1044
本刊由国家卫生和计划生育委员会主管,湖北省卫生厅、中国抗癌协会、湖北省肿瘤医院主办。
0

文章信息

李亚青,樊慧杰,张明智,钟亚莉,李小丽,索振河. 2014.
LI Yaqing, FAN Huijie, ZHANG Mingzhi, ZHONG Yali, LI Xiaoli, SUO Zhenhe. 2014.
丙酮酸脱氢酶与肿瘤
Pyruvate Dehydrogenase and Tumor
肿瘤防治研究, 2014, 41(09): 1040-1044
Cancer Research on Prevention and Treatment, 2014, 41(09): 1040-1044
http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2014.09.018

文章历史

收稿日期:2013-07-11
修回日期:2013-11-15
丙酮酸脱氢酶与肿瘤
李亚青, 樊慧杰, 张明智, 钟亚莉, 李小丽, 索振河    
450052 郑州,郑州大学第一附属医院肿瘤科
摘要:丙酮酸脱氢酶是丙酮酸生成乙酰辅酶A的关键酶,而乙酰辅酶A是葡萄糖进入三羧酸循环有 氧氧化的首要原料。丙酮酸脱氢酶激酶可以抑制丙酮酸脱氢酶的活性。肿瘤细胞的总体丙酮酸脱氢酶 激酶表达增加,造成丙酮酸脱氢酶活性降低,导致肿瘤细胞主要通过糖酵解的方式获取能量。恶性肿 瘤糖酵解活跃能促进细胞增殖和抑制细胞凋亡,而形成肿瘤细胞糖酵解的微环境可保护肿瘤细胞逃避 宿主免疫杀伤并减轻化疗药物损伤,还有利于肿瘤细胞的侵袭和转移。因此,丙酮酸脱氢酶在肿瘤的 发生发展过程中起作用。事实上胚胎干细胞以及成体干细胞也主要是以糖酵解的方式获取能量。由此 推断,丙酮酸脱氢酶的活性可能与肿瘤细胞的干性相关。
关键词丙酮酸脱氢酶     糖酵解     肿瘤     丙酮酸     三羧酸循环    
Pyruvate Dehydrogenase and Tumor
LI Yaqing, FAN Huijie, ZHANG Mingzhi, ZHONG Yali, LI Xiaoli, SUO Zhenhe    
Department of Oncology, The First Affiliated Hospital of Zhengzhou University, Zhengzhou 450052, China
Abstract:Pyruvate dehydrogenase is a key enzyme which transforms pyruvate into acetyl-coenzyme A (acetyl-CoA) by pyruvate decarboxylation. Acetyl coenzyme A is the primary raw material for aerobic oxidation of glucose into the Krebs cycle. The activity of pyruvate dehydrogenase can be negatively regulated by pyruvate dehydrogenase kinase. The overall expression of pyruvate dehydrogenase kinase is increased in tumor cells, which results in the decreasing activity of pyruvate dehydrogenase with an increased glycolysis for energy even in the presence of oxygen. The increased glycolytic activity of malignant tumor cells can promote cell proliferation and inhibit apoptosis. The glycolytic microenvironment protects tumor cells from host immune system and chemotherapy resistance, and promotes tumor cells invasion and metastasis. Embryonic and adult stem cells rely on glycolysis for energy. Thus, the activity of pyruvate dehydrogenase plays an important role in regulation of cancer cell stemness.
Key words: Pyruvate dehydrogenase     Glycolysis     Tumor     Pyruvate     Krebs cycle    
0 引言

正常细胞的能量代谢特点是使用葡萄 糖在线粒体内进行氧化磷酸化(oxidative phosphorylation,OXPHOS),这种代谢方式既经 济,效率也高。肿瘤细胞能量代谢的特点表现 在活跃地摄取葡萄糖,进行有氧糖酵解 (aerobic glycolysis)。这种看上去很不经济的能量供给方 式对肿瘤细胞却是必需的,它既为肿瘤细胞的不 断生长提供能量,也为它们提供了生物合成的原 料。肿瘤细胞这种能量代谢方式早在20 世纪 20 年 代就被德国科学家Otto Warburg观察到,故又称 Warburg效应[1]。有氧糖酵解是恶性肿瘤细胞独特 的能量代谢特点,葡萄糖的摄取和糖酵解处于增高 状态是肿瘤细胞的生物学特征之一。肿瘤干细胞 (cancer stem cells,CSCs或tumor stem cells,TSCs) 是肿瘤组织中少量的致瘤能力强、有自我更新和 分化潜能的细胞,是近年来肿瘤学研究的热点之 一。研究表明,低氧的微环境与肿瘤细胞的干性 维持密切相关[2,3,4],而低氧也可以迫使细胞进行糖 酵解,由此推测,糖酵解可能是肿瘤细胞维持其 干性特性的重要途径。而丙酮酸脱氢酶作为细胞 进入三羧酸循环的关键限速酶,在调节糖酵解和 糖氧化磷酸化中起重要作用,因此丙酮酸脱氢酶 的活性可能与肿瘤细胞的干性维持相关。 1 丙酮酸脱氢酶基因结构、染色体定位和复合体

丙酮酸脱氢酶(pyruvate dehydrogenase,PDH), 是由丙酮酸脱氢酶 E1α亚单位(PDHA1)和E1β 亚单位(PDHB)基因编码的α和β亚基组成的结 合硫胺素焦磷酸盐(TPP)的异四聚体[5]。Koike 等[6]首先克隆和测序了编码人类PDHE1α和E1β亚 单位的cDNA序列。PDHA1的基因组DNA全长 15.92kB,含有11个外显子,位于X染色体短臂 上(Xp22.1~22.2)。其中含有保守的硫辛酸焦 磷酸盐结合区,位于外显子6的编码195氨基酸残 基和外显子7的编码255氨基酸残基之间。此外, 在4号染色体上有一段与PDHA1同源的无内含子 的序列,主要在睾丸组织表达。PDHB基因位于 3p13~q23,全长1.5kB,含有10个外显子。

丙酸酸脱氢酶复合体(pyruvate dehydrogenase complex,PDHc)是定位在线粒体中的多酶复合 物,PDHc包含3个催化酶和2个调节酶,以及3个 辅因子和1个结合蛋白。催化酶分别是丙酮酸脱氢 酶(E1)、二氢硫辛酰胺转乙酰酶E2和二氢硫辛 酸脱氢酶E3。E3不是PDHc特定的,但是被其他两 个丙酮酸脱氢酶复合物组份共享,从而E3活性不 足通常有超越预期分离的丙酮酸脱氢酶复合体缺 乏的后果。丙酮酸脱氢酶复合体的所有蛋白均是 核编码的。

高等生物中丙酮酸脱氢酶复合体的快速调 节主要是由PDH激酶(pyruvate dehydrogenase kinase,PDK)和磷酸酶(pyruvate dehydrogenase phosphatase,PDP)介导E1α亚基可逆性磷酸化实现 的,丙酮酸脱氢酶E1α亚基存在三个磷酸化位点。 而细菌的PDHc活性主要是通过别构效应来调节, PDHc缺陷导致代谢障碍,组织受损[7]2 丙酮酸脱氢酶的功能

PDHc是一组限速酶,催化丙酮酸不可逆氧 化脱羧转化成乙酰辅酶A(Aacetyl CoA),同时将 NAD+还原为NADH,使糖的有氧氧化与三羧酸循 环和氧化磷酸化连接起来,在细胞线粒体呼吸链能 量代谢中起着重要的作用。丙酮酸脱氢酶复合体 广泛存在于微生物、哺乳动物及高等植物中,该 复合体在有线粒体的任何生物细胞中的能量产出 方面都非常重要,PDHc缺陷将导致一系列复杂的 病理生理变化。

PDHc缺陷是导致线粒体能量代谢障碍最常见 的原因之一,同时也是儿童乳酸酸中毒和早发性 退行性神经变性病的最常见病因。脑内乙酰辅酶A 几乎都来源于丙酮酸,所以PDHc的缺乏常导致多 种神经系统损害,如大脑发育不全、Leigh’s脑病 和间歇性共济失调[8]。Brown等[9]首先在2个患者中 发现E1β亚单位缺乏。该基因缺陷的临床表现相对 轻微,主要表现为乳酸酸中毒和肌张力低下。

虽然PDHc缺乏的临床表现谱很广,主要的临 床表现包括神经系统及神经肌肉退行性变性,神 经影像学表现为结构病变,生化方面的异常主要 为乳酸性酸中毒和血乳酸丙酮酸比值≤2.0。 3 肿瘤组织中丙酮酸脱氢酶的作用

瓦伯格效应是肿瘤细胞能量代谢的一个特 征,形成了肿瘤细胞依赖细胞质糖酵解生成ATP 代替了线粒体氧化磷酸化的作用。虽然糖酵解是 一种产能效率较低的过程,但对于肿瘤细胞来说 却是一个有益的权衡,可能是肿瘤细胞对化疗和 放射治疗抵抗的基础;同时使肿瘤细胞突变率增 加,从而使肿瘤细胞的侵袭和转移能力也增强[10]

肿瘤细胞偏向于糖酵解获取能量,部分是由 于肿瘤细胞中PDK活性上调而抑制了PDH的活 性。研究显示通过二氯乙酸(DCA)靶向抑制 PDK促进了肿瘤细胞的代谢形式由糖酵解转化为 氧化磷酸化并且抑制了肿瘤的生长。这一发现显 示PDK/PDH轴可能对肿瘤细胞的代谢生长起一定 的作用[11]。另一研究显示与癌旁组织相比,PDK3 在结肠癌组织中的表达极大的增加,且PDK3的表 达与缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)的表达呈正相关, 其表达水平的高低与肿瘤的严重性和无疾病进展 生存具有相关性。同时体外研究发现,结肠癌细 胞系PDK3的表达是由HIF-1α控制且对缺氧诱导细 胞耐药起到一定作用,这也解释了为什么PDK3 过表达的患者容易出现治疗失败。而下调PDK3的 表达减低了细胞在缺氧条件下的生存率并且减弱 了缺氧诱导的乳酸产生和药物耐药[12]。这均说明 了在肿瘤组织及细胞中丙酮酸脱氢酶激酶活性增 高或降低与肿瘤的恶性表型具有一定的相关性。 另一项研究也提示缺氧调节的PDK3的过表达极大 抑制了细胞的凋亡并增加了对顺铂或紫杉醇的耐 药。而敲除PDK3抑制了缺氧诱导的糖酵解且增加 了肿瘤细胞对顺铂、紫杉醇、奥沙利铂等抗癌药 物的敏感度[13]。这些结果显示PDK3或PDH与缺氧 诱导的药物耐药相关并且可能是一个潜在的新的 提高化疗疗效和克服药物耐药的靶点。

有氧糖酵解与肿瘤的恶性表型及较差临床 预后的相关性国内外文献已有不少报道,但它 们之间的机制联系却鲜有报道。缺氧诱导因子 (hypoxia-inducible factors,HIFs )被认为在调 节肿瘤细胞的糖代谢代谢转换中起一定作用。 McFate等[14]发现在头颈部鳞癌中,使用shRNA下 调PDK-1,恢复PDHc的活性,能够减低肿瘤的生 长和侵袭能力,同时HIF-1α的表达也降低。PDK-1 可能是HIF-1α的调节蛋白,HIF-1α与肿瘤细胞的 干性程度具有一定相关性[15,16],因此我们推断丙酮 酸脱氢酶缺乏或活性降低可能与肿瘤的恶性表型 及干性程度相关。Zhao等[17]同样研究了HIF-1α与 PDK及PDH之间的相互关系。该研究显示缺氧通 过上调HIF-1α诱导了PDK3的表达,从而促进了代 谢从线粒体氧化呼吸向糖酵解的方式转变。而PDK 作为PDHc活性的主要调节者,间接表明了PDH与 HIF-1α和肿瘤干细胞可能具有潜在的相关性。

肿瘤组织中PDK-1的过表达引起了代谢由有氧 氧化向糖酵解的转换,而对于正常高表达PDK的 组织,却未出现这种代谢的转换[18]

综上研究表明高水平或者低水平的丙酮酸脱 氢酶可能是细胞通过加强糖酵解维持其干细胞特 性的重要途径。其机制可能在于其大量糖酵解产 生的中间代谢产物的特殊调控功能。 4 丙酮酸脱氢酶与其他疾病

丙酮酸脱氢酶缺乏症是儿童乳酸酸中毒和早 发性、退行性神经变性病的最常见病症[19,20]。它是 由于先天的PDHc中E1、E2和E3的基因突变所造成 的糖代谢阻碍,导致机体内丙酮酸大量积累,被乳 酸脱氢酶催化转化为大量的乳酸,从而引起乳酸中 毒,主要表现为乳酸酸中毒和脑发育不全,严重 时甚至出现新生儿期死亡。

丙酮酸脱氢酶复合体是一个年龄相关疾病的 治疗靶点。这些年龄相关的疾病包括肌肉减少 症、葡萄糖不耐症、神经退行性疾病和癌症[21]。 通过抑制PDK激活PDHc已经成为了一个有效的避 免心肌疾病的治疗靶点,尤其是在心脏手术和局 部缺血时。另外,糖尿病及肥胖患者的PDHc活性 降低,葡萄糖有氧氧化也下降。丙酮酸脱氢酶缺 乏引起了脑、心肌、骨骼肌和其他组织的分化功 能障碍。PDHc严重缺乏时在胚胎期影响了脑的发 育导致了大脑的结构性发育异常和癫痫症;中等 缺乏时引起了认知障碍、共济失调和轻度的癫痫 发作[19]。另外一项最新的通过代谢谱检测和功能 干预的研究,确定了PDH在癌基因BRAF V600E 诱导的细胞衰老中起关键作用。BRAF V600E诱导 的衰老同时伴随着PDK1的抑制和丙酮酸脱氢酶磷 酸酶2(PDP2)的诱导激活,而通过激活PDK1或 失活PDP2抑制了PDH并清除了OIS,因此沉默了 BRAF V600E驱动的黑色素瘤的发展。这些结果揭 示了OIS与一个关键的代谢信号途径PDK1-PDP2- PDH机制联系,可以作为治疗的靶点[22]。因此我们 假设:丙酮酸脱氢酶活性增加,葡萄糖进入三羧 酸循环进行有氧氧化的程度提高,细胞得以正常 的分化;而丙酮酸脱氢酶的活性降低,细胞的干 性维持较高,细胞难以分化,形成相关的组织/器 官的功能障碍。 5 抑制丙酮酸脱氢酶的途径 5.1 化学抑制剂

4个丙酮酸脱氢酶激酶的异构体和2个丙酮酸 磷酸化酶异构体控制了PDHc的活性状态。两者联 合作用的磷酸化-去磷酸化循环决定了激活的、非 磷酸化丙酮酸脱氢酶的比例。通过抑制PDK的活 性来增加PDHc复合体的活性是糖尿病、心脏疾病 治疗的药物靶点,最近也应用到了肿瘤中[23]。目 前丙酮酸脱氢酶激酶1、2、3被鉴定为肿瘤抗糖酵 解治疗的潜在靶点。

丙酮酸脱氢酶主要是在丙酮酸脱氢酶复合体 中存在,通过直接靶向该酶以改变其活性是比较 困难的,目前的研究主要集中在PDHc的直接调 节者PDK上。直接靶向丙酮酸脱氢酶复合体的抑 制剂也逐渐出现。丁酸是结肠细菌发酵产生的短 链脂肪酸,在结肠癌细胞中丁酸可以靶向PDC的 活性。丁酸治疗后肿瘤细胞的特征是乳酸产生减 少并且肿瘤细胞增殖抑制[23]。目前发现苯基丁酸 (phenylbutyrate),应用于尿素循环缺陷和肿瘤 患者中的药物,导致了纤维母细胞和小鼠中磷酸 化的E1a亚单位的减少和酶活性的增加[24]5.2 小分子抑制剂二氯乙酸钠与肿瘤治疗的新进展

令人关注的是,Bonnet等[25]报道采用二氯乙 酸(DCA)处理肿瘤细胞,可以显著地抑制其存活及 移植瘤的生长。DCA是一种小分子丙酮酸脱氢酶 激酶抑制剂,目前被批准用于先天性乳酸中毒症 的治疗。DCA能通过抑制PDK去磷酸化激活丙酮 酸脱氢酶(pyruvate dehydrogenase,PDH),促进 葡萄糖的氧化磷酸化,这一过程中释放大量的活 性氧(reactive oxygen species,ROS)和细胞色素 C,上调K+通道电位,导致K+外流和caspase凋亡通 路的活化,而进一步促进凋亡、抑制肿瘤细胞生 长。基于这一原理,DCA作为抗癌药物的临床应 用与开发将具有一定前景。Cao等[26]报道了DCA增 加了野生型和Bcl-2过表达的前列腺癌细胞对放疗 的敏感度,这种作用是通过与Bcl-2相互作用增强 了凋亡机制。Fiebiger等[27]也报道了DCA在体外能 增加部分铂类药物卡铂、赛特铂及其代谢物JM118 对化疗耐药的肺癌细胞株的敏感度。总之,通过 DCA靶向PDK能增加肿瘤细胞对化疗、放疗的敏 感度并且能克服药物耐药。但是DCA具有肝脏和 外周神经毒性。 5.3 siRNA设计

国内一项研究采用干扰质粒降低结肠癌细胞 LS174T的PDK-1表达,检测了在不同浓度5-Fu作 用下该组细胞和对照细胞的半数抑制浓度,结果 表明PDK-1干扰的LS174T细胞的IC50数值显著低于 对照组细胞。说明抑制PDK-1后结肠癌LS174T对 5-Fu治疗更敏感,使结肠癌细胞在较低的药物浓 度下达到较高的凋亡率[28]6 丙酮酸脱氢酶与肿瘤细胞的干性

胚胎干细胞、造血干细胞、成体干细胞以及 体外诱导的多能干细胞的能量代谢特征之一也 是偏向糖酵解的方式获取能量,这些细胞中糖 酵解活性也增强[29,30]。而对前列腺癌、食管癌和 卵巢癌细胞系体外不同氧浓度下干细胞特性的研 究发现,肿瘤细胞在低氧情况下可以相应上调缺 氧诱导因子,从而上调上述干细胞相关因子。随 着这些干细胞相关因子的上调,细胞的克隆形成 能力、球形生长能力、多药耐药因子三磷酸腺苷 结合盒转运体成员ABCG2(ATP-binding cassette superfamily G member2)以及细胞表面干细胞相关 分子CD133和CD44high等的表达也相继大大提高, 肿瘤细胞的干性程度增加[2]。低氧的微环境与肿瘤 细胞的干性维持密切相关,而低氧的条件也迫使 细胞通过糖酵解的方式产生能量。据此推测迫使 肿瘤细胞进行糖酵解可能会增加肿瘤细胞的干性 水平。通过靶向三羧酸循环与糖酵解代谢转换的 关键酶丙酮酸脱氢酶,通过RNA干扰或基因敲除 等办法降低或者消除丙酮酸脱氢酶活性可能是获 得肿瘤干细胞的途径之一。有效的办法是通过体 外实验在细胞系中敲除丙酮酸脱氢酶基因,观察 细胞的生物学特性及干细胞特性变化的规律,并 进一步对稳定的丙酮酸脱氢酶基因敲除的细胞系 进行动物实验,观察其成瘤能力,进一步研究丙 酮酸脱氢酶活性与肿瘤干细胞的关系,从而研究肿 瘤干细胞的干性调节将具有积极的意义。

某些细胞如Beta细胞中大约50%的葡萄糖来 源的丙酮酸是通过丙酮酸脱氢酶复合物转化成 乙酰辅酶A而进入三羧酸循环进行有氧代谢, 其余的50%则可通过丙酮酸羧化酶(pyruvate carboxylase)所催化的补偿途径草酰乙酸进入三羧 酸循环。等量的丙酮酸通过这两种途径进入三羧 酸循环[31]。另外一项动物试验表明肝细胞中丙酮酸 经补偿途径进入三羧酸循环可以是经丙酮酸脱氢 酶途径的7倍,说明细胞的丙酮酸进入三羧酸循环 的补偿途径可以有很大的细胞特异性[32]。因此可 以推断丙酮酸脱氢酶基因敲除后某些细胞可以通 过代偿作用增强丙酮酸羧化酶途径来增强丙酮酸 进入三羧酸循环,其确切作用仍需要一定的体内 外实验研究证实。 7 结论

丙酮酸脱氢酶作为葡萄糖有氧氧化的主要限速 酶之一,在肿瘤细胞的糖代谢中起到了关键的作 用。肿瘤细胞的瓦伯格效应使肿瘤细胞倾向于糖酵 解的方式获得能量,且肿瘤细胞中糖代谢由氧化磷 酸化转化为糖酵解方式的比例变化与肿瘤细胞的 恶性程度相关。先天性丙酮酸脱氢酶缺乏引起的 乳酸酸中毒症状和脑发育不全等都与细胞的分化 障碍相关,提示丙酮酸脱氢酶的正常活性是细胞 正常分化的保证。从一定意义上讲,肿瘤是细胞分 化障碍性疾病,而肿瘤干细胞之所以可以维持其很 高的干性特性,极有可能与其高度的有氧糖酵解能 力相关。推测肿瘤细胞糖酵解过程中的某些中间产 物可能是维持肿瘤细胞干性的重要调节因子,而通 过敲除丙酮酸脱氢酶这一糖酵解过程的关键酶迫 使细胞主要通过糖酵解的方式获取能量可能是获 取肿瘤干细胞的途径之一。

参考文献
[1] Warburg O.On the origin of cancer cells[J].Science,1956,123(3191): 309-14.
[2] Ma Y, Liang D, Liu J, et al. Prostate cancer cell lines under hypoxiaexhibit greater stem-like properties[J]. PLoS One,2011,6(12):e29170.
[3] Liang D, Ma Y, Liu J,et al. The hypoxic microenvironment upgradesstem-like properties of ovarian cancer cells[J]. BMC Cancer,2012,12:201.
[4] Liu J, Fan H, Ma Y, et al. Notch1 is a 5-fluorouracil resistantand poor survival marker in human esophagus squamous cellcarcinomas[J]. PLoS One,2013, 8(2): e56141.
[5] Ciszak E, Korotchkina LG, Hong YS, et al. Crystallizationand initial X-ray diffraction analysis of human pyruvatedehydrogenase[J]. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr,2001,57(Pt 3): 465-8.
[6] Koike K, Ohta S, Urata Y, et al. Cloning and sequencing ofcDNAs encoding alpha and beta subunits of human pyruvatedehydrogenase[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,1988,85(1):41-5.
[7] Jeong JY, Jeoung NH, Park KG, et al. Transcriptional regulationof pyruvate dehydrogenase kinase[J]. Diabetes MetabJ,2012,36(5):328-35.
[8] Patel KP, O'Brien TW, Subramony SH, et al. The spectrumof pyruvate dehydrogenase complex deficiency: clinical,biochemical and genetic features in 371 patients[J]. Mol GenetMetab,2012,105(1):34-43.
[9] Brown RM, Head RA, Boubriak II, et al. Mutations in the genefor the E1beta subunit: a novel cause of pyruvate dehydrogenasedeficiency[J]. Hum Genet, 2004, 115(2):123-7.
[10] Wu W, Zhao S. Metabolic changes in cancer: beyond the Warburgeffect[J]. Acta Biochim Biophys Sin(Shanghai),2013, 45(1):18-26.
[11] Lu CW, Lin SC, Chen KF, et al. Induction of pyruvate dehydrogenasekinase-3 by hypoxia-inducible factor-1 promotes metabolic switchand drug resistance[J]. J Biol Chem,2008, 283(42):28106-14.
[12] Lu CW, Lin SC, Chien CW, et al. Overexpression of pyruvatedehydrogenase kinase-3 increases drug resistance and earlyrecurrence in colon cancer[J]. Am J Pathol,2011,179(3):1405-14.
[13] Hur H, Xuan Y, Kim YB, et al. Expression of pyruvatedehydrogenase kinase-1 in gastric cancer as a potential therapeutictarget[J]. Int J Oncol,2013,42(1):44-54.
[14] McFate T, Mohyeldin A, Lu H, et al. Pyruvate dehydrogenasecomplex activity controls metabolic and malignant phenotype incancer cells[J]. J Biol Chem,2008,283(33):22700-8.
[15] Schwab LP, Peacock DL, Majumdar D, et al. Hypoxia-induciblefactor 1α promotes primary tumor growth and tumor-initiatingcell activity in breast cancer[J]. Breast Cancer Res,2012,14(1):R6.
[16] Lee JH, Shim JW, Choi YJ, et al. The combination of sorafeniband radiation preferentially inhibits breast cancer stem cells bysuppressing HIF-1α expression[J]. Oncol Rep,2013,29(3):917-24.
[17] Zhao Y, Butler EB, Tan M. Targeting cellular metabolism toimprove cancer therapeutics[J]. Cell Death Dis,2013,4:e532.
[18] Stacpoole PW. The pyruvate dehydrogenase complex asa therapeutic target for age-related diseases[J]. AgingCell,2012,11(3):371-7.
[19] Prasad C, Rupar T, Prasad AN, et al. Pyruvate dehydrogenasedeficiency and epilepsy[J]. Brain Dev, 2011,33(10):856-65.
[20] Barnerias C,Saudubray JM,Touati G, et al. Pyruvate dehydrogenasecomplex deficiency: four neurological phenotypes with differingpathogenesis[J]. Dev Med Child Neurol, 2010,52(2):e1-9.
[21] Roche TE, Hiromasa Y. Pyruvate dehydrogenase kinase regulatorymechanisms and inhibition in treating diabetes, heart ischemia andcancer[J]. Cell Mol Life Sci, 2007, 64(7-8):830-49.
[22] Kaplon J, Zheng L, Meissl K, et al. A key role for mitochondrialgatekeeper pyruvate dehydrogenase in oncogene-inducedsenescence[J]. Nature, 2013, 498(7452):109-12.
[23] Blouin JM, Penot G, Collinet M, et al. Butyrate elicits a metabolicswitch in human colon cancer cells by targeting the pyruvatedehydrogenase complex[J]. Int J Cancer, 2011, 128(11):2591-601.
[24] Ferriero R, Brunetti-Pierri N. Anti-cancer drug phenylbutyrateincreases activity of pyruvate dehydrogenase complex[J].Oncotarget, 2013, 6(4):804-5.
[25] Bonnet S, Archer SL, Allalunis-Turner J, et al. A mitochondria-K+channel axis is suppressed in cancer and its normalizationpromotes apoptosis and inhibits cancer growth[J]. CancerCell,2007,11(1):37-51.
[26] Cao W, Yacoub S, Shiverick KT, et al. Dichloroacetate (DCA)sensitizes both wild-type and over expressing Bcl-2 prostatecancer cells in vitro to radiation[J]. Prostate,2008,68(11):1223-31.
[27] Fiebiger W, Olszewski U, Ulsperger E, et al. In vitro cytotoxicityof novel platinum-based drugs and dichloroac-etate against lungcarcinoid cell lines[J]. Clin Transl Oncol, 2011, 13(1): 43-9.
[28] Xie GF, Liang HJ, Tong JT, et al. Promoting effect of RNAinterferedpyruvate dehydrogenase kinase isozyme-1 on5-fluorouracial-induced apoptosis of colon cancer cells[J]. Di SanJun Yi Da Xue Xue Bao, 2012,34(1):9-12.[谢赣丰,梁后杰,童晶涛,等.RNA干扰PDK-1对5-FU诱导结肠癌细胞凋亡的促进作用[J].第三军医大学学报,2012,34(1):9-12.]
[29] Chung S, Arrell DK, Faustino RS, et al. Glycolytic networkrestructuring integral to the energetics of embryonic stem cellcardiac differentiation[J]. J Mol Cell Cardiol,2010,48(4):725-34.
[30] Varum S, Rodrigues AS, Moura MB, et al. Energy metabolismin human pluripotent stem cells and their differentiatedcounterparts[J]. PLoS One,2011,6(6):e20914.
[31] Srinivasan M, Choi CS, Ghoshal P, et al. β-Cell-specific pyruvatedehydrogenase deficiency impairs glucose-stimulated insulinsecretion[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab,2010,299(6):e910-7.
[32] Sidhu S, Gangasani A, Korotchkina LG, et al. Tissue-specificpyruvate dehydrogenase complex deficiency causes cardiachypertrophy and sudden death of weaned male mice[J]. Am JPhysiol Heart Circ Physiol,2008,295(3): H946-52.