文章信息
- 李亚青,樊慧杰,张明智,钟亚莉,李小丽,索振河. 2014.
- LI Yaqing, FAN Huijie, ZHANG Mingzhi, ZHONG Yali, LI Xiaoli, SUO Zhenhe. 2014.
- 丙酮酸脱氢酶与肿瘤
- Pyruvate Dehydrogenase and Tumor
- 肿瘤防治研究, 2014, 41(09): 1040-1044
- Cancer Research on Prevention and Treatment, 2014, 41(09): 1040-1044
- http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2014.09.018
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文章历史
- 收稿日期:2013-07-11
- 修回日期:2013-11-15
正常细胞的能量代谢特点是使用葡萄 糖在线粒体内进行氧化磷酸化(oxidative phosphorylation,OXPHOS),这种代谢方式既经 济,效率也高。肿瘤细胞能量代谢的特点表现 在活跃地摄取葡萄糖,进行有氧糖酵解 (aerobic glycolysis)。这种看上去很不经济的能量供给方 式对肿瘤细胞却是必需的,它既为肿瘤细胞的不 断生长提供能量,也为它们提供了生物合成的原 料。肿瘤细胞这种能量代谢方式早在20 世纪 20 年 代就被德国科学家Otto Warburg观察到,故又称 Warburg效应[1]。有氧糖酵解是恶性肿瘤细胞独特 的能量代谢特点,葡萄糖的摄取和糖酵解处于增高 状态是肿瘤细胞的生物学特征之一。肿瘤干细胞 (cancer stem cells,CSCs或tumor stem cells,TSCs) 是肿瘤组织中少量的致瘤能力强、有自我更新和 分化潜能的细胞,是近年来肿瘤学研究的热点之 一。研究表明,低氧的微环境与肿瘤细胞的干性 维持密切相关[2,3,4],而低氧也可以迫使细胞进行糖 酵解,由此推测,糖酵解可能是肿瘤细胞维持其 干性特性的重要途径。而丙酮酸脱氢酶作为细胞 进入三羧酸循环的关键限速酶,在调节糖酵解和 糖氧化磷酸化中起重要作用,因此丙酮酸脱氢酶 的活性可能与肿瘤细胞的干性维持相关。 1 丙酮酸脱氢酶基因结构、染色体定位和复合体
丙酮酸脱氢酶(pyruvate dehydrogenase,PDH), 是由丙酮酸脱氢酶 E1α亚单位(PDHA1)和E1β 亚单位(PDHB)基因编码的α和β亚基组成的结 合硫胺素焦磷酸盐(TPP)的异四聚体[5]。Koike 等[6]首先克隆和测序了编码人类PDHE1α和E1β亚 单位的cDNA序列。PDHA1的基因组DNA全长 15.92kB,含有11个外显子,位于X染色体短臂 上(Xp22.1~22.2)。其中含有保守的硫辛酸焦 磷酸盐结合区,位于外显子6的编码195氨基酸残 基和外显子7的编码255氨基酸残基之间。此外, 在4号染色体上有一段与PDHA1同源的无内含子 的序列,主要在睾丸组织表达。PDHB基因位于 3p13~q23,全长1.5kB,含有10个外显子。
丙酸酸脱氢酶复合体(pyruvate dehydrogenase complex,PDHc)是定位在线粒体中的多酶复合 物,PDHc包含3个催化酶和2个调节酶,以及3个 辅因子和1个结合蛋白。催化酶分别是丙酮酸脱氢 酶(E1)、二氢硫辛酰胺转乙酰酶E2和二氢硫辛 酸脱氢酶E3。E3不是PDHc特定的,但是被其他两 个丙酮酸脱氢酶复合物组份共享,从而E3活性不 足通常有超越预期分离的丙酮酸脱氢酶复合体缺 乏的后果。丙酮酸脱氢酶复合体的所有蛋白均是 核编码的。
高等生物中丙酮酸脱氢酶复合体的快速调 节主要是由PDH激酶(pyruvate dehydrogenase kinase,PDK)和磷酸酶(pyruvate dehydrogenase phosphatase,PDP)介导E1α亚基可逆性磷酸化实现 的,丙酮酸脱氢酶E1α亚基存在三个磷酸化位点。 而细菌的PDHc活性主要是通过别构效应来调节, PDHc缺陷导致代谢障碍,组织受损[7]。 2 丙酮酸脱氢酶的功能
PDHc是一组限速酶,催化丙酮酸不可逆氧 化脱羧转化成乙酰辅酶A(Aacetyl CoA),同时将 NAD+还原为NADH,使糖的有氧氧化与三羧酸循 环和氧化磷酸化连接起来,在细胞线粒体呼吸链能 量代谢中起着重要的作用。丙酮酸脱氢酶复合体 广泛存在于微生物、哺乳动物及高等植物中,该 复合体在有线粒体的任何生物细胞中的能量产出 方面都非常重要,PDHc缺陷将导致一系列复杂的 病理生理变化。
PDHc缺陷是导致线粒体能量代谢障碍最常见 的原因之一,同时也是儿童乳酸酸中毒和早发性 退行性神经变性病的最常见病因。脑内乙酰辅酶A 几乎都来源于丙酮酸,所以PDHc的缺乏常导致多 种神经系统损害,如大脑发育不全、Leigh’s脑病 和间歇性共济失调[8]。Brown等[9]首先在2个患者中 发现E1β亚单位缺乏。该基因缺陷的临床表现相对 轻微,主要表现为乳酸酸中毒和肌张力低下。
虽然PDHc缺乏的临床表现谱很广,主要的临 床表现包括神经系统及神经肌肉退行性变性,神 经影像学表现为结构病变,生化方面的异常主要 为乳酸性酸中毒和血乳酸丙酮酸比值≤2.0。 3 肿瘤组织中丙酮酸脱氢酶的作用
瓦伯格效应是肿瘤细胞能量代谢的一个特 征,形成了肿瘤细胞依赖细胞质糖酵解生成ATP 代替了线粒体氧化磷酸化的作用。虽然糖酵解是 一种产能效率较低的过程,但对于肿瘤细胞来说 却是一个有益的权衡,可能是肿瘤细胞对化疗和 放射治疗抵抗的基础;同时使肿瘤细胞突变率增 加,从而使肿瘤细胞的侵袭和转移能力也增强[10]。
肿瘤细胞偏向于糖酵解获取能量,部分是由 于肿瘤细胞中PDK活性上调而抑制了PDH的活 性。研究显示通过二氯乙酸(DCA)靶向抑制 PDK促进了肿瘤细胞的代谢形式由糖酵解转化为 氧化磷酸化并且抑制了肿瘤的生长。这一发现显 示PDK/PDH轴可能对肿瘤细胞的代谢生长起一定 的作用[11]。另一研究显示与癌旁组织相比,PDK3 在结肠癌组织中的表达极大的增加,且PDK3的表 达与缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)的表达呈正相关, 其表达水平的高低与肿瘤的严重性和无疾病进展 生存具有相关性。同时体外研究发现,结肠癌细 胞系PDK3的表达是由HIF-1α控制且对缺氧诱导细 胞耐药起到一定作用,这也解释了为什么PDK3 过表达的患者容易出现治疗失败。而下调PDK3的 表达减低了细胞在缺氧条件下的生存率并且减弱 了缺氧诱导的乳酸产生和药物耐药[12]。这均说明 了在肿瘤组织及细胞中丙酮酸脱氢酶激酶活性增 高或降低与肿瘤的恶性表型具有一定的相关性。 另一项研究也提示缺氧调节的PDK3的过表达极大 抑制了细胞的凋亡并增加了对顺铂或紫杉醇的耐 药。而敲除PDK3抑制了缺氧诱导的糖酵解且增加 了肿瘤细胞对顺铂、紫杉醇、奥沙利铂等抗癌药 物的敏感度[13]。这些结果显示PDK3或PDH与缺氧 诱导的药物耐药相关并且可能是一个潜在的新的 提高化疗疗效和克服药物耐药的靶点。
有氧糖酵解与肿瘤的恶性表型及较差临床 预后的相关性国内外文献已有不少报道,但它 们之间的机制联系却鲜有报道。缺氧诱导因子 (hypoxia-inducible factors,HIFs )被认为在调 节肿瘤细胞的糖代谢代谢转换中起一定作用。 McFate等[14]发现在头颈部鳞癌中,使用shRNA下 调PDK-1,恢复PDHc的活性,能够减低肿瘤的生 长和侵袭能力,同时HIF-1α的表达也降低。PDK-1 可能是HIF-1α的调节蛋白,HIF-1α与肿瘤细胞的 干性程度具有一定相关性[15,16],因此我们推断丙酮 酸脱氢酶缺乏或活性降低可能与肿瘤的恶性表型 及干性程度相关。Zhao等[17]同样研究了HIF-1α与 PDK及PDH之间的相互关系。该研究显示缺氧通 过上调HIF-1α诱导了PDK3的表达,从而促进了代 谢从线粒体氧化呼吸向糖酵解的方式转变。而PDK 作为PDHc活性的主要调节者,间接表明了PDH与 HIF-1α和肿瘤干细胞可能具有潜在的相关性。
肿瘤组织中PDK-1的过表达引起了代谢由有氧 氧化向糖酵解的转换,而对于正常高表达PDK的 组织,却未出现这种代谢的转换[18]。
综上研究表明高水平或者低水平的丙酮酸脱 氢酶可能是细胞通过加强糖酵解维持其干细胞特 性的重要途径。其机制可能在于其大量糖酵解产 生的中间代谢产物的特殊调控功能。 4 丙酮酸脱氢酶与其他疾病
丙酮酸脱氢酶缺乏症是儿童乳酸酸中毒和早 发性、退行性神经变性病的最常见病症[19,20]。它是 由于先天的PDHc中E1、E2和E3的基因突变所造成 的糖代谢阻碍,导致机体内丙酮酸大量积累,被乳 酸脱氢酶催化转化为大量的乳酸,从而引起乳酸中 毒,主要表现为乳酸酸中毒和脑发育不全,严重 时甚至出现新生儿期死亡。
丙酮酸脱氢酶复合体是一个年龄相关疾病的 治疗靶点。这些年龄相关的疾病包括肌肉减少 症、葡萄糖不耐症、神经退行性疾病和癌症[21]。 通过抑制PDK激活PDHc已经成为了一个有效的避 免心肌疾病的治疗靶点,尤其是在心脏手术和局 部缺血时。另外,糖尿病及肥胖患者的PDHc活性 降低,葡萄糖有氧氧化也下降。丙酮酸脱氢酶缺 乏引起了脑、心肌、骨骼肌和其他组织的分化功 能障碍。PDHc严重缺乏时在胚胎期影响了脑的发 育导致了大脑的结构性发育异常和癫痫症;中等 缺乏时引起了认知障碍、共济失调和轻度的癫痫 发作[19]。另外一项最新的通过代谢谱检测和功能 干预的研究,确定了PDH在癌基因BRAF V600E 诱导的细胞衰老中起关键作用。BRAF V600E诱导 的衰老同时伴随着PDK1的抑制和丙酮酸脱氢酶磷 酸酶2(PDP2)的诱导激活,而通过激活PDK1或 失活PDP2抑制了PDH并清除了OIS,因此沉默了 BRAF V600E驱动的黑色素瘤的发展。这些结果揭 示了OIS与一个关键的代谢信号途径PDK1-PDP2- PDH机制联系,可以作为治疗的靶点[22]。因此我们 假设:丙酮酸脱氢酶活性增加,葡萄糖进入三羧 酸循环进行有氧氧化的程度提高,细胞得以正常 的分化;而丙酮酸脱氢酶的活性降低,细胞的干 性维持较高,细胞难以分化,形成相关的组织/器 官的功能障碍。 5 抑制丙酮酸脱氢酶的途径 5.1 化学抑制剂
4个丙酮酸脱氢酶激酶的异构体和2个丙酮酸 磷酸化酶异构体控制了PDHc的活性状态。两者联 合作用的磷酸化-去磷酸化循环决定了激活的、非 磷酸化丙酮酸脱氢酶的比例。通过抑制PDK的活 性来增加PDHc复合体的活性是糖尿病、心脏疾病 治疗的药物靶点,最近也应用到了肿瘤中[23]。目 前丙酮酸脱氢酶激酶1、2、3被鉴定为肿瘤抗糖酵 解治疗的潜在靶点。
丙酮酸脱氢酶主要是在丙酮酸脱氢酶复合体 中存在,通过直接靶向该酶以改变其活性是比较 困难的,目前的研究主要集中在PDHc的直接调 节者PDK上。直接靶向丙酮酸脱氢酶复合体的抑 制剂也逐渐出现。丁酸是结肠细菌发酵产生的短 链脂肪酸,在结肠癌细胞中丁酸可以靶向PDC的 活性。丁酸治疗后肿瘤细胞的特征是乳酸产生减 少并且肿瘤细胞增殖抑制[23]。目前发现苯基丁酸 (phenylbutyrate),应用于尿素循环缺陷和肿瘤 患者中的药物,导致了纤维母细胞和小鼠中磷酸 化的E1a亚单位的减少和酶活性的增加[24]。 5.2 小分子抑制剂二氯乙酸钠与肿瘤治疗的新进展
令人关注的是,Bonnet等[25]报道采用二氯乙 酸(DCA)处理肿瘤细胞,可以显著地抑制其存活及 移植瘤的生长。DCA是一种小分子丙酮酸脱氢酶 激酶抑制剂,目前被批准用于先天性乳酸中毒症 的治疗。DCA能通过抑制PDK去磷酸化激活丙酮 酸脱氢酶(pyruvate dehydrogenase,PDH),促进 葡萄糖的氧化磷酸化,这一过程中释放大量的活 性氧(reactive oxygen species,ROS)和细胞色素 C,上调K+通道电位,导致K+外流和caspase凋亡通 路的活化,而进一步促进凋亡、抑制肿瘤细胞生 长。基于这一原理,DCA作为抗癌药物的临床应 用与开发将具有一定前景。Cao等[26]报道了DCA增 加了野生型和Bcl-2过表达的前列腺癌细胞对放疗 的敏感度,这种作用是通过与Bcl-2相互作用增强 了凋亡机制。Fiebiger等[27]也报道了DCA在体外能 增加部分铂类药物卡铂、赛特铂及其代谢物JM118 对化疗耐药的肺癌细胞株的敏感度。总之,通过 DCA靶向PDK能增加肿瘤细胞对化疗、放疗的敏 感度并且能克服药物耐药。但是DCA具有肝脏和 外周神经毒性。 5.3 siRNA设计
国内一项研究采用干扰质粒降低结肠癌细胞 LS174T的PDK-1表达,检测了在不同浓度5-Fu作 用下该组细胞和对照细胞的半数抑制浓度,结果 表明PDK-1干扰的LS174T细胞的IC50数值显著低于 对照组细胞。说明抑制PDK-1后结肠癌LS174T对 5-Fu治疗更敏感,使结肠癌细胞在较低的药物浓 度下达到较高的凋亡率[28]。 6 丙酮酸脱氢酶与肿瘤细胞的干性
胚胎干细胞、造血干细胞、成体干细胞以及 体外诱导的多能干细胞的能量代谢特征之一也 是偏向糖酵解的方式获取能量,这些细胞中糖 酵解活性也增强[29,30]。而对前列腺癌、食管癌和 卵巢癌细胞系体外不同氧浓度下干细胞特性的研 究发现,肿瘤细胞在低氧情况下可以相应上调缺 氧诱导因子,从而上调上述干细胞相关因子。随 着这些干细胞相关因子的上调,细胞的克隆形成 能力、球形生长能力、多药耐药因子三磷酸腺苷 结合盒转运体成员ABCG2(ATP-binding cassette superfamily G member2)以及细胞表面干细胞相关 分子CD133和CD44high等的表达也相继大大提高, 肿瘤细胞的干性程度增加[2]。低氧的微环境与肿瘤 细胞的干性维持密切相关,而低氧的条件也迫使 细胞通过糖酵解的方式产生能量。据此推测迫使 肿瘤细胞进行糖酵解可能会增加肿瘤细胞的干性 水平。通过靶向三羧酸循环与糖酵解代谢转换的 关键酶丙酮酸脱氢酶,通过RNA干扰或基因敲除 等办法降低或者消除丙酮酸脱氢酶活性可能是获 得肿瘤干细胞的途径之一。有效的办法是通过体 外实验在细胞系中敲除丙酮酸脱氢酶基因,观察 细胞的生物学特性及干细胞特性变化的规律,并 进一步对稳定的丙酮酸脱氢酶基因敲除的细胞系 进行动物实验,观察其成瘤能力,进一步研究丙 酮酸脱氢酶活性与肿瘤干细胞的关系,从而研究肿 瘤干细胞的干性调节将具有积极的意义。
某些细胞如Beta细胞中大约50%的葡萄糖来 源的丙酮酸是通过丙酮酸脱氢酶复合物转化成 乙酰辅酶A而进入三羧酸循环进行有氧代谢, 其余的50%则可通过丙酮酸羧化酶(pyruvate carboxylase)所催化的补偿途径草酰乙酸进入三羧 酸循环。等量的丙酮酸通过这两种途径进入三羧 酸循环[31]。另外一项动物试验表明肝细胞中丙酮酸 经补偿途径进入三羧酸循环可以是经丙酮酸脱氢 酶途径的7倍,说明细胞的丙酮酸进入三羧酸循环 的补偿途径可以有很大的细胞特异性[32]。因此可 以推断丙酮酸脱氢酶基因敲除后某些细胞可以通 过代偿作用增强丙酮酸羧化酶途径来增强丙酮酸 进入三羧酸循环,其确切作用仍需要一定的体内 外实验研究证实。 7 结论
丙酮酸脱氢酶作为葡萄糖有氧氧化的主要限速 酶之一,在肿瘤细胞的糖代谢中起到了关键的作 用。肿瘤细胞的瓦伯格效应使肿瘤细胞倾向于糖酵 解的方式获得能量,且肿瘤细胞中糖代谢由氧化磷 酸化转化为糖酵解方式的比例变化与肿瘤细胞的 恶性程度相关。先天性丙酮酸脱氢酶缺乏引起的 乳酸酸中毒症状和脑发育不全等都与细胞的分化 障碍相关,提示丙酮酸脱氢酶的正常活性是细胞 正常分化的保证。从一定意义上讲,肿瘤是细胞分 化障碍性疾病,而肿瘤干细胞之所以可以维持其很 高的干性特性,极有可能与其高度的有氧糖酵解能 力相关。推测肿瘤细胞糖酵解过程中的某些中间产 物可能是维持肿瘤细胞干性的重要调节因子,而通 过敲除丙酮酸脱氢酶这一糖酵解过程的关键酶迫 使细胞主要通过糖酵解的方式获取能量可能是获 取肿瘤干细胞的途径之一。
[1] | Warburg O.On the origin of cancer cells[J].Science,1956,123(3191): 309-14. |
[2] | Ma Y, Liang D, Liu J, et al. Prostate cancer cell lines under hypoxiaexhibit greater stem-like properties[J]. PLoS One,2011,6(12):e29170. |
[3] | Liang D, Ma Y, Liu J,et al. The hypoxic microenvironment upgradesstem-like properties of ovarian cancer cells[J]. BMC Cancer,2012,12:201. |
[4] | Liu J, Fan H, Ma Y, et al. Notch1 is a 5-fluorouracil resistantand poor survival marker in human esophagus squamous cellcarcinomas[J]. PLoS One,2013, 8(2): e56141. |
[5] | Ciszak E, Korotchkina LG, Hong YS, et al. Crystallizationand initial X-ray diffraction analysis of human pyruvatedehydrogenase[J]. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr,2001,57(Pt 3): 465-8. |
[6] | Koike K, Ohta S, Urata Y, et al. Cloning and sequencing ofcDNAs encoding alpha and beta subunits of human pyruvatedehydrogenase[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,1988,85(1):41-5. |
[7] | Jeong JY, Jeoung NH, Park KG, et al. Transcriptional regulationof pyruvate dehydrogenase kinase[J]. Diabetes MetabJ,2012,36(5):328-35. |
[8] | Patel KP, O'Brien TW, Subramony SH, et al. The spectrumof pyruvate dehydrogenase complex deficiency: clinical,biochemical and genetic features in 371 patients[J]. Mol GenetMetab,2012,105(1):34-43. |
[9] | Brown RM, Head RA, Boubriak II, et al. Mutations in the genefor the E1beta subunit: a novel cause of pyruvate dehydrogenasedeficiency[J]. Hum Genet, 2004, 115(2):123-7. |
[10] | Wu W, Zhao S. Metabolic changes in cancer: beyond the Warburgeffect[J]. Acta Biochim Biophys Sin(Shanghai),2013, 45(1):18-26. |
[11] | Lu CW, Lin SC, Chen KF, et al. Induction of pyruvate dehydrogenasekinase-3 by hypoxia-inducible factor-1 promotes metabolic switchand drug resistance[J]. J Biol Chem,2008, 283(42):28106-14. |
[12] | Lu CW, Lin SC, Chien CW, et al. Overexpression of pyruvatedehydrogenase kinase-3 increases drug resistance and earlyrecurrence in colon cancer[J]. Am J Pathol,2011,179(3):1405-14. |
[13] | Hur H, Xuan Y, Kim YB, et al. Expression of pyruvatedehydrogenase kinase-1 in gastric cancer as a potential therapeutictarget[J]. Int J Oncol,2013,42(1):44-54. |
[14] | McFate T, Mohyeldin A, Lu H, et al. Pyruvate dehydrogenasecomplex activity controls metabolic and malignant phenotype incancer cells[J]. J Biol Chem,2008,283(33):22700-8. |
[15] | Schwab LP, Peacock DL, Majumdar D, et al. Hypoxia-induciblefactor 1α promotes primary tumor growth and tumor-initiatingcell activity in breast cancer[J]. Breast Cancer Res,2012,14(1):R6. |
[16] | Lee JH, Shim JW, Choi YJ, et al. The combination of sorafeniband radiation preferentially inhibits breast cancer stem cells bysuppressing HIF-1α expression[J]. Oncol Rep,2013,29(3):917-24. |
[17] | Zhao Y, Butler EB, Tan M. Targeting cellular metabolism toimprove cancer therapeutics[J]. Cell Death Dis,2013,4:e532. |
[18] | Stacpoole PW. The pyruvate dehydrogenase complex asa therapeutic target for age-related diseases[J]. AgingCell,2012,11(3):371-7. |
[19] | Prasad C, Rupar T, Prasad AN, et al. Pyruvate dehydrogenasedeficiency and epilepsy[J]. Brain Dev, 2011,33(10):856-65. |
[20] | Barnerias C,Saudubray JM,Touati G, et al. Pyruvate dehydrogenasecomplex deficiency: four neurological phenotypes with differingpathogenesis[J]. Dev Med Child Neurol, 2010,52(2):e1-9. |
[21] | Roche TE, Hiromasa Y. Pyruvate dehydrogenase kinase regulatorymechanisms and inhibition in treating diabetes, heart ischemia andcancer[J]. Cell Mol Life Sci, 2007, 64(7-8):830-49. |
[22] | Kaplon J, Zheng L, Meissl K, et al. A key role for mitochondrialgatekeeper pyruvate dehydrogenase in oncogene-inducedsenescence[J]. Nature, 2013, 498(7452):109-12. |
[23] | Blouin JM, Penot G, Collinet M, et al. Butyrate elicits a metabolicswitch in human colon cancer cells by targeting the pyruvatedehydrogenase complex[J]. Int J Cancer, 2011, 128(11):2591-601. |
[24] | Ferriero R, Brunetti-Pierri N. Anti-cancer drug phenylbutyrateincreases activity of pyruvate dehydrogenase complex[J].Oncotarget, 2013, 6(4):804-5. |
[25] | Bonnet S, Archer SL, Allalunis-Turner J, et al. A mitochondria-K+channel axis is suppressed in cancer and its normalizationpromotes apoptosis and inhibits cancer growth[J]. CancerCell,2007,11(1):37-51. |
[26] | Cao W, Yacoub S, Shiverick KT, et al. Dichloroacetate (DCA)sensitizes both wild-type and over expressing Bcl-2 prostatecancer cells in vitro to radiation[J]. Prostate,2008,68(11):1223-31. |
[27] | Fiebiger W, Olszewski U, Ulsperger E, et al. In vitro cytotoxicityof novel platinum-based drugs and dichloroac-etate against lungcarcinoid cell lines[J]. Clin Transl Oncol, 2011, 13(1): 43-9. |
[28] | Xie GF, Liang HJ, Tong JT, et al. Promoting effect of RNAinterferedpyruvate dehydrogenase kinase isozyme-1 on5-fluorouracial-induced apoptosis of colon cancer cells[J]. Di SanJun Yi Da Xue Xue Bao, 2012,34(1):9-12.[谢赣丰,梁后杰,童晶涛,等.RNA干扰PDK-1对5-FU诱导结肠癌细胞凋亡的促进作用[J].第三军医大学学报,2012,34(1):9-12.] |
[29] | Chung S, Arrell DK, Faustino RS, et al. Glycolytic networkrestructuring integral to the energetics of embryonic stem cellcardiac differentiation[J]. J Mol Cell Cardiol,2010,48(4):725-34. |
[30] | Varum S, Rodrigues AS, Moura MB, et al. Energy metabolismin human pluripotent stem cells and their differentiatedcounterparts[J]. PLoS One,2011,6(6):e20914. |
[31] | Srinivasan M, Choi CS, Ghoshal P, et al. β-Cell-specific pyruvatedehydrogenase deficiency impairs glucose-stimulated insulinsecretion[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab,2010,299(6):e910-7. |
[32] | Sidhu S, Gangasani A, Korotchkina LG, et al. Tissue-specificpyruvate dehydrogenase complex deficiency causes cardiachypertrophy and sudden death of weaned male mice[J]. Am JPhysiol Heart Circ Physiol,2008,295(3): H946-52. |