实质性肿瘤细胞过度增殖可导致肿瘤内部及其周围受压形成缺氧,从而使得肿瘤细胞的迁移 及浸润能力增加[ 1 ],但持续缺氧又可导致肿瘤细 胞死亡。肿瘤细胞为适应缺氧而发生一系列生物 学改变,其中HIF-1α是促进这一系列改变的关键 性调控因子。近年来自噬成为肿瘤治疗研究的热 点,肺癌细胞可能通过自噬机制保护其生存,避 免凋亡,但另一方面,自噬也可能诱导肺癌细 胞发生自噬性细胞死亡从而促进肺癌的逆转。目 前,阻断表皮生长因子受体(epidermal growth factor receptor,EGFR)信号通路被认为是治疗非 小细胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)的 关键靶点,口服EGFR小分子抑制剂吉非替尼是 NSCLC靶向治疗的代表药物。本实验研究吉非替 尼作用于缺氧条件下肺腺癌A549细胞时HIF-1α与 自噬表达的变化以及肺癌细胞凋亡水平的变化, 探讨他们在肺癌靶向治疗中的关系。 1 材料与方法 1.1 细胞与试剂
实验细胞株: 人肺腺癌A5 4 9 细胞株,由 苏州大学南校区免疫实验室提供,吉非替尼 (Gefitinib,商品名:Iressa /易瑞沙),美国阿斯 利康公司产品,剂型:250 毫克/片,HIF-1α 鼠抗 人单克隆抗体 sc-53546(SANTA CRUZ公司), LC3B Protein(Human)ab62721抗体(英国Abcam 公司),Beta-actin抗体(碧云天生物技术研究 所),HRP标记鼠抗兔IgG(碧云天生物技术研 究所),碘化丙啶(Propidium Iodide,PI)美国 Sigma公司,细胞周期检测试剂盒(联科生物技术 有限公司),Annexin V-FITC及细胞凋亡检测试剂 盒(南京凯基生物科技发展有限公司)。 1.2 实验设计和方法 1.2.1 吉非替尼准备
吉非替尼片剂用细胞培 养液和DMSO溶解,配制成25 mg/ml的药品混悬 液,-20℃冰箱保存,实验配制50 μg/ml DMEM培 养液。 1.2.2 分组与处理
人肺腺癌A549细胞以每毫升 3×105个传代培养后分组:(1)常氧组(C组): 37℃、5%CO2,21%O2;(2)吉非替尼组(G 组):Gefitinib(50 μg/ml)处理;(3)缺氧组 (H组):37℃、5%CO2,1%O2;(4)吉非替尼 +缺氧组(G + H组):50 μg/ml Gefitinib +1%O2。 1.2.3 细胞检测 按上述分组分别处理A549细 胞24 h后,(1)Western blot检测HIF-1α蛋白及 MAPLC3-Ⅱ蛋白表达水平:用蛋白裂解液裂解 细胞后,提取细胞总蛋白,BCA蛋白浓度测定法 测定蛋白浓度,并根据测蛋白浓度稀释样品蛋白 (蛋白定量),随后取样品蛋白40 μg,电泳分离、 转膜、5%脱脂奶粉封闭1 h,一抗4℃孵育过夜后洗 涤,二抗室温孵育1 h后洗涤,ECL法显色,标定 Marker,进行分析与扫描;(2)透射电子显微镜 观察A549细胞胞质内自噬小体数量的变化:将4组 A549细胞分别固定于4%戊二醛中,梯度脱水、包 埋、切50~70 nm薄片,醋酸双氧铀、柠檬酸铅双 染(整个操作过程均在冰上进行),电子显微镜 观察A549细胞内自噬的产生及变化;(3)流式 细胞术检测细胞凋亡率:分别收集4组A549细胞, 每组细胞加入500 μl的Binding Buffer悬浮细胞,之 后加入5 μl Annexin V-FITC混匀,再加入5 μl PI混 匀,室温、避光、反应15 min,1 h内流式细胞仪 上检测细胞凋亡率。 1.3 统计学方法
数据以±s表示,各组间比较采用单因素方差 分析,两组间比较采用配对t检验,以P<0.05为差 异具有统计学意义,统计学分析均应用IBM SPSS 19.0统计软件处理。 2 结果 2.1 各组HIF-1α蛋白表达的变化
HIF-1α蛋白检测显示:C组和G组基本无表 达,分别为(0.24±0.05)和(0.11±0.03),考 虑为A549细胞在常氧培养过程中部分细胞缺氧 所致干扰,H组(0.78±0.04)较C组表达显著增 加(1.34±0.08),G+H组表达较H组下降(P均 <0.05),见图 1。
MAPLC3-Ⅱ的含量与自噬泡的数量呈正相 关,是自噬体的特异性标记蛋白。MAPLC3-Ⅱ 蛋白检测显示:C组为(0.85±0.06),G组和H组 分别为(1.32±0.03)和(1.62±0.05),均较C组 增高,G+H组(1.97±0.04)较C组明显增高 (P均 <0.05),见图 2。
透射电子显微镜是检测自噬最为可靠的方法 和“金标准”。C组细胞结构清晰,自噬小体散在可 见;G组和H组细胞内自噬比较活跃,G+H组胞质 内可见线粒体嵴断裂且肿胀变形、空泡化。G组、 H组和G+H组的自噬小体数量均较C组明显增多, 见图 3。
C组细胞凋亡率为(7.20±1.80)%,G+H组 (34.4±3.95)%较C组显著增加,且较G组和H组 [(20.03±1.12)%和(16.77±1.15)%]均明显增高 (均P<0.05),见图 4。
既往研究证实HIF-1α在多种肿瘤组织中表 达,肿瘤细胞通过高表达HIF-1α对其下游基因进 行调控以适应缺氧环境,促进肿瘤生长、侵袭、 转移等。因此,本研究应用靶向治疗药物吉非替 尼作用于缺氧条件下肺腺癌A549细胞,检测HIF- 1α蛋白与自噬表达水平的变化以及肿瘤细胞凋亡 率的变化,探讨HIF-1α及自噬表达与吉非替尼的 肺癌靶向治疗机制之间的关系。
本实验结果显示常氧或吉非替尼作用下HIF- 1α蛋白基本无表达。随后通过缺氧诱导模拟肿瘤 内低氧环境,发现缺氧24 h后A549细胞中HIF-1α 蛋白表达明显增加,证实了肺腺癌细胞为适应缺 氧导致HIF-1α蛋白表达上调。另外显示,吉非替 尼作用于缺氧的A549细胞,明显抑制HIF-1α蛋白 表达。Lu等[ 2 ]在西妥昔单抗(抗EGFR的单克隆抗 体)介导的头颈部鳞癌放射增敏机制的研究中发 现,西妥昔单抗通过抑制辐射诱导的HIF-1α上调 而产生放射增敏作用。通过抑制缺氧诱导的HIF- 1α蛋白表达上调可能是吉非替尼抗肿瘤作用机制 之一,但还需进一步实验研究其信号通路的变化 从而探索其中机制。
本实验中,MAPLC3-Ⅱ蛋白检测及透射电子 显微镜观察结果均证实,吉非替尼或缺氧单独作 用均可诱导A549细胞自噬上调,而两者共同作用 时这种诱导自噬上调趋势更明显,表现出一种叠 加作用。Li等[ 3 ]研究证实,西妥昔单抗通过下调 HIF-1α的表达来诱导肿瘤细胞的自噬表达。既往 研究证实PI3K/AKT/mTOR信号转导通路是自噬上 游控制信号,吉非替尼或缺氧条件可引起NSCLC 细胞系中自噬上游控制信号PI3K/AKT信号通路 激活,继而诱导肺癌细胞自噬上调。Rho等[ 4 ]研究 证实可以通过调节HIF-1α的表达来避免缺氧环境 导致的吉非替尼耐药。雷帕霉素(一种自噬诱导 剂)已被证实可通过下调缺氧环境下NSCLC细胞 株的HIF-1α表达来诱导肿瘤细胞凋亡[ 5 ]。但“HIF- 1α—自噬通路”与“EGFR-PI3K/AKT/mTOR通 路”之间通过何种方式交联目前还未明确。Larsen 等[ 6 ]观察到在肿瘤组织中表达的EGFR和HIF-1α之 间呈正相关关系,在缺氧条件下,活化的EGFR通 过PI3K途径在翻译水平增加了HIF表达。下一步我 们将从PI3K/AKT/mTOR信号转导通路进行实验研 究,探索HIF-1α与EGFR之间的信号交联机制。
本实验还显示,吉非替尼作用于缺氧A549 细胞后,细胞凋亡率比吉非替尼或缺氧单独作用 时明显增加,提示吉非替尼既能诱导缺氧条件下 A549细胞自噬上调,也能促进低氧状态下A549 细胞凋亡。自噬和凋亡均对肿瘤细胞具有双重作 用。在肿瘤早期发生过程中,自噬主要抑制肿瘤 的形成,此时若自噬功能降低则会导致癌前病变 的发展,相反凋亡在早期可促进肿瘤的发生[ 7 ]。由 于自噬过程和调控网络十分复杂,且自噬和凋亡 密切相关,在肿瘤中起着十分重要的作用。推测 在肿瘤治疗的不同时期,细胞自噬与凋亡之间可 能存在某种共同的调节因素和信号调控交汇点, 靶向治疗药物可分别或同时诱导自噬和凋亡,产 生抗肿瘤效果。
综上所述,吉非替尼能诱导缺氧的A549细胞 中自噬上调,并能抑制缺氧诱导的HIF-1α表达, 破坏了肺癌细胞适应缺氧的能力,使肺癌细胞凋 亡增加,从而可能促进肺癌的良性转归,HIF-1α 及自噬表达与吉非替尼的肺癌靶向治疗机制之 间可能存在相关性。但“HIF-1α—自噬通路”与 “EGFR-PI3K/AKT/mTOR通路”之间通过何种方 式交联目前还未明确,仍需要进一步研究证实。 深入研究自噬与凋亡间潜在的串流机制,寻找调 节自噬和凋亡平衡的分子开关,可为联合应用自 噬和凋亡来有效控制肿瘤的进展奠定基础。
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