肿瘤防治研究  2014, Vol.41 Issue (7): 737-739.   PDF    
脑胶质瘤细胞化疗耐药中p38MAPK信号通路的作用
吴立权,郭振涛,刘宝辉,田道锋,杨吉安,张申起,陈谦学    
430060 武汉,武汉大学人民医院神经外科
摘要目的 探讨p38MAPK信号通路在脑胶质瘤细胞化疗耐药中的作用及相关机制。方法 在前期建立U251/TMZ胶质瘤耐药细胞株的基础上,用特异性阻断剂SB203580阻断耐药细胞株中p38MAPK信号通路,替莫唑胺作用下检测耐药株的细胞活性变化,同时检测MDR1、TopoⅡ、BCL-2等耐药相关基因的蛋白表达变化。结果 阻断通路后替莫唑胺作用下细胞的抑制率明显低于未阻断组,两组之间比较差异有统计学意义(P<0.05),阻断后耐药细胞中BCL-2、MDR1的表达明显升高,TopoⅡ的表达明显降低,与未阻断的耐药细胞相比较差异有统计学意义(P<0.05)。结论 U251/TMZ胶质瘤耐药细胞中p38MAPK信号通路被阻断后细胞的耐药性增强,其机制可能与耐药株中耐药相关基因BCL-2、TopoⅡ、MDR1的表达变化有关。
关键词: 化疗耐药     p38MAPK信号通路     胶质瘤    
Mechanism of p38MAPK Signal Pathway on Chemosensitivity of Glioma Drugresistance Cells
WU Liquan, GUO Zhentao, LIU Baohui, TIAN Daofeng, YANG Ji’an, ZHANG Shenqi, CHEN Qianxue    
Department of Neurosurgery, Renmin Hospital of Wuhan University, Wuhan 430060, China
AbstractObjective To investigate the mechanism of p38MAPK signal pathway on chemosensitivity of glioma drug-resistance cells. Methods After the U251/TMZ resistant glioma cell line was established,p38MAPK signaling pathway was blocked with the specific inhibitor SB203580. Cell activity was detected by MTT. Expression changes of MDR1, BCL-2 and TopoⅡ were detected by Western blot. Results The activity of drug-resistance cells was improved significantly after the signal pathway was blocked. With different concentrations of TMZ, the expression of BCL-2 and MDR1 were increased while TopoⅡ expression was decreased significantly in blocked group,compared with unblocked group, with significant difference (P<0.05). Conclusion Blocked p38MAPK signaling pathway activates the chemosensitivity of glioma drug-resistance cells, and the mechanism may be related to the changes of MDR1, BCL -2 and TopoⅡ expression.
Key words: Drug-resistance     p38MAPK signal pathway     Glioma    
0 引言

脑胶质瘤是人类中枢神经系统中最常见的恶性 肿瘤,主要采取手术为主辅以放射及化学治疗的综 合治疗方案,但其预后并未得到明显改善。放化疗 抵抗和肿瘤复发仍是治疗效果不佳的主要原因[1]。 目前关于胶质瘤多药耐药的研究较多,但具体分子 机制仍不清楚,是研究热点之一。本课题在前期建 立胶质瘤耐药细胞株的基础上,探讨p38MAPK信 号通路在脑胶质瘤细胞化疗耐药中的作用。 1 材料与方法 1.1 实验细胞及主要试剂

人脑恶性胶质瘤细胞系U251购于中国科学院上 海生命科学研究院生物化学与细胞生物学研究所。 U251/TMZ耐药细胞株由本实验室自行构建并保存 [2]。DMEM培养液及胰蛋白酶购自美国Gibico公司; 胎牛血清购自杭州四季青生物材料公司;DMSO 购自武汉天源生物技术公司。PVDF膜购自瑞典 Amersham公司;Bcl-2、TopoⅡ、MDR1抗体(兔来 源的多克隆)和辣根过氧化物酶标记山羊抗兔(羊 抗鼠二抗)购自Santa Cruz公司;DAB试剂盒购自福 州迈新公司;细胞凋亡-Hoechst染色试剂盒购自碧 云天生物技术公司;SB20358购自Alexis公司。 1.2 主要仪器

80 L细胞培养箱购自德国HERAENS公司; 超净工作台为苏州净化集团产品,CK-40倒置相 差显微镜及照相系统购自日本Olympus公司;电 子分析天平购自美国丹佛公司,恒温摇床为上海 振华公司产品;LS6500多功能液体闪烁计数仪为 Beckman Counlter公司产品,5301型真空干燥仪 由德国Eppendorf公司提供,高速台式离心购自 Hitachi公司,低温高速离心机购自Beckman公司。 HV3000多用电泳仪购自北京东方仪器厂,TS-1型 脱色摇床购自上海亚荣生化仪器厂。 1.3 细胞培养

将本实验室自行建立并保存的U251/TMZ细胞 复苏,将细胞悬液接种于培养瓶,置于体积分数 5%CO2,95%湿度条件的培养箱37℃条件下连续培 养。每2 d更换1次培养液,待细胞铺满瓶底约80% 以上时,用0.25%胰蛋白酶溶液消化,1∶3传代。 1.4 p38MAPK信号通路的阻断

U251/TMZ耐药细胞在培养瓶中长至80%融合 时,换含1%血清培养液,继续培养24 h使细胞同 步化,后加SB203580(20 μM)预孵育1 h,设立 阴性对照组,两组中分别加入替莫唑胺作用,检 测细胞活性及相关耐药基因的表达变化。 1.5 MTT法检测细胞活性变化

将每孔1×104个细胞接种于96孔板,37℃培养过 夜。按不同浓度替莫唑胺(0、1、2、4、8 μg/ml) 进行给药,并设未阻断空白对照组,各24个复孔。 避光孵育48 h,孵育结束前4 h加入5 μg/ml MTT 20 μl,4 h后弃孔内液,每孔加入150 μl DMSO溶液, 避光震荡10 min,分光光度计测490 nm处光吸收值 (A),计算细胞抑制率=(1-抑制组平均A值/细胞 空白对照组A值) ×100%。实验重复3次,取其均值。 1.6 Western blot检测相关耐药基因蛋白表达

收集8 μg/ml替莫唑胺作用48 h的细胞,提取 总蛋白,取蛋白20 μg以10%SDS-PAGE电泳分离, 浓缩胶电压50~80 V,分离胶80~100 V。PVDF转 膜,转膜条件为200 mA 60 min,丽春红染色,以 相应蛋白的抗体鉴定MDR1蛋白、TopoⅡ蛋白、 BCL-2蛋白,ECL增强试剂盒显色,GAPDH做对 照,将结果行凝胶图像分析。 1.7 统计学方法

收集并整理实验数据,运用Excel 2007处理 MTT的数据,用SPSS17.0统计软件包作统计学 处理,计量资料以均数±标准差(x±s)表示。以 P<0.05为差异有统计学意义。 2 结果 2.1 细胞活性的变化

用特异性抑制剂SB203580阻断p38MAPK通路 后,不同浓度替莫唑胺作用48 h,MTT法检测未 阻断及阻断后U251/TMZ耐药细胞的活性,观察耐 药细胞化疗敏感度的变化。结果显示,阻断通路 后,不同浓度替莫唑胺作用下细胞的抑制率明显 低于未阻断组,两组之间比较差异有统计学意义 (P<0.05),说明p38MAPK被阻断后,细胞的耐 药性有所增强,见图 1

图 1 阻断P38MAPK通路后细胞活性的变化 Figure 1 Change of cell activity after p38MAPK signal pathway was blocked
2.2 基因表达变化

我们检测了在阻断前后耐药相关基因MDR1、 Bcl-2、TopoⅡ在U251/TMZ耐药细胞中的表达变 化情况。结果显示,阻断后耐药细胞中Bcl-2、 MDR1的表达明显升高,TopoⅡ的表达明显降低, 见图 2A。与未阻断的耐药细胞相比较,差异有统 计学意义,见图 2B。提示p38MAPK信号通路的阻 断后细胞耐药性的变化,可能与耐药株中耐药相 关基因Bcl-2、TopoⅡ、MDR1的表达变化有关。

*:P<0.05,Δ:P<0.05,◊:P<0.05 图 2 阻断P38MAPK通路后耐药相关基因表达变化 Figure 2 Changes of resistance-associated gene expression after P38MAPK signal pathway was blocked
3 讨论

胶质瘤是中枢神经系统肿瘤中最常见的恶性 肿瘤,约占颅内肿瘤的35.26%~60.96%[3],术后复 发率高,患者预后差。尽管目前普遍认为化疗可 使脑胶质瘤患者生存获益,但临床证实其延长生 存期的作用十分有限。研究胶质瘤的化疗耐药机 制是目前研究的热点之一。

丝裂原活化的蛋白激酶( mitogen-activated protein kinase,MAPK) 是一组可被多种信号激 活的丝/苏氨酸激酶。研究证实,MAPK信号转 导通路存在于大多数细胞内,其作用过程涉及多 层次的细胞调节,对生理、病理刺激可作出不同 反应,同时其可将细胞外刺激信号转导至细胞核 内,并引起细胞增殖、分化、转化、凋亡等生物 学反应[4],目前已有诸多实验发现MAPK信号转导 通路可能参与肿瘤化疗耐药。Zhao等[5]通过检测3 株人胰腺癌耐药细胞株发现,ERK的表达升高, 且使用ERK/MAPK通路阻断剂后,耐药细胞株对 化疗药物(氟尿嘧啶、阿霉素、吉西他滨)的敏 感度发生变化,因此推断ERK/MAPK通路参与了 胰腺癌细胞耐药过程,同时检测了磷酸化Bcl-2 的表达,结果表明ERK/MAPK通路可能是通过调 节Bcl-2而导致胰腺癌细胞耐药。Hernández Losa 等[6]发现顺铂可持续、特异性激活多株癌细胞中 p38MAPK并引发细胞毒作用,而顺铂耐药的细胞 株相对于非耐药株在顺铂作用下p38活性明显减弱 或缺失,经p38特异性抑制剂SKF860002预处理的 肿瘤细胞在顺铂作用下表现出细胞活性增强,说 明p38MAPK受抑制可能是顺铂耐药的原因。在本 组实验中,我们使用特异性阻断剂阻断p38MAPK 信号通路后,胶质瘤耐药株的细胞耐药性明显增 强,与以上结论一致,说明p38MAPK信号通路参 与了胶质瘤化疗耐药的形成。

详细充分地了解肿瘤细胞多药耐药的机制, 是寻找有效的逆转肿瘤化疗多药耐药方法的必要 条件。目前研究普遍认为,由ABC转运子超家族 (ATP-binding cassette transporter superfamily) 的跨膜转运蛋白所介导的机制是导致多药耐药的 主要原因。在ABC转运子超家族中,对P糖蛋白 (P-glycoprotein,P-gp)的研究最多[7],但研究提 示MDR1在胶质瘤患者中的表达也并不十分常见, P-gp的高表达并不是胶质瘤MDR的唯一因素。但 我们在前期的实验中明显发现MDR1在胶质瘤耐药 细胞中的表达升高,说明MDR1可能与胶质瘤的耐 药相关[2],在本实验中,我们发现U251/TMZ耐药 细胞在p38MAPK信号通路阻断后,细胞耐药性增 强,同时伴随有MDR1表达的明显升高,进一步说 明MDR1可能参与了胶质瘤化疗耐药的形成。

拓扑异构酶Ⅱ(TopoⅡ)是一种重要的酶, 主要作用为控制DNA双链结构的切割和重组结合 而影响DNA拓扑,是很多抗肿瘤药物的靶蛋白。 TopoⅡ含量的高低与肿瘤细胞的耐药性密切相 关,被认为是人脑胶质瘤化疗耐药的重要原因之 一。已有很多研究证实原发胶质瘤的分级与Topo Ⅱα的表达呈明显正相关,即胶质瘤的级别越高, 其中TopoⅡα的表达越强。Uesaka等[8]研究发现, 依托泊苷对成神经管细胞瘤的化疗具有良好的作 用,机制可能是其TopoⅡα与TopoⅡβ均有高表 达,提示TopoⅡ含量和活性的降低可能与肿瘤在 治疗过程的获得性耐药密切相关。本实验中也发 现,阻断p38MAPK信号通路后,TopoⅡ的表达含 量下降,胶质瘤耐药细胞的耐药性增强,研究结 果与以上结论一致。

Bcl-2在正常组织中的作用主要是保护正常细 胞免受毒物的侵害,保证细胞的存活。Bcl-2与化 疗耐药的关系也有所研究。Bcl-2的表达升高可 以导致肿瘤的化疗耐药性和肿瘤细胞的增殖,同 时,将Bcl-2基因转染到恶性胶质瘤细胞中可以导 致放疗和细胞毒性药物的效果明显降低[9]。在本实 验中发现,细胞耐药性的升高明显伴有Bcl-2表达 的升高,说明Bcl-2与胶质瘤的耐药性明确相关。

总之,本文初步研究了p38MAPK信号通路在 脑胶质瘤细胞化疗耐药中的作用及相关机制,证 实p38MAPK信号通路的活化可明显提高胶质瘤耐 药细胞的化疗耐药性,提示我们p38MAPK信号通 路可作为一个作用靶点,为下一步寻找逆转胶质 瘤耐药策略提供理论依据。

参考文献
[1] Calatozzolo C, Pollo B, Botturi A, et al. Multidrug resistance proteins expression in glioma patients with epilepsy[J]. J Neurooncol,2012,110(1):129-35.
[2] Liu B, Chen Q, Tian D, et al. BMP4 reverses multidrug resistance through modulation of BCL-2 and GDNF in glioblastoma[J]. Brain Res, 2013, 1507:115-24.
[3] Suk K. Proteomic analysis of glioma chemoresistance[J]. Curr Neuropharmacol, 2012, 10(1): 72-9.
[4] Johnson GL, Lapadat R. Mitgen-activated protein kinase pathways mediated by ERK, JNK, and p38 protein kinases[J]. Science, 2002, 298(5600):1911-2.
[5] Zhao Y,Shen S,Guo J,et al.Mitogen-activated protein kinases and chemoresistance in pancreatic cancer cells[J]. J Surg Res,2006,136(2) : 325-35.
[6] Hernández Losa J, Parada Cobo C, Guinea Viniegra J, et al. Role of the p38 MAPK pathway in cisplatin-based therapy[J]. Oncogene, 2003, 22(26):3998-4006.
[7] Shi H, Lu D, Shu Y,et al. Expression of multidrug-resistancerelated proteins P-glycoprotein, glutathione-S-transferases, topoisomerase-II and lung resistance protein in primary gastric cardiac adenocarcinoma[J]. Cancer Invest, 2008, 26(4):344-51.
[8] Uesaka T, Shono T, Kuga D, et al. Enhanced expression of DNA topoisomerase Ⅱ genes in human medulloblastoma and its possible association with etoposide sensitivity[J]. J Neurooncol, 2007,84(2):119-29.
[9] van de Donk NW, Bloem AC, van der Spek E, et al. New treatment strategies for multiple myeloma by targeting BCL-2 and the mevalonate pathway[J]. Curr Pharm Des, 2006,12(3):327-40.