赭曲霉毒素A(ochratoxin A,OTA)是由曲 霉菌属和青霉菌属的某些菌株产生的一种真菌毒 素,其污染非常普遍,广泛存在于小麦、玉米、 豆类等粮食作物以及咖啡、葡萄酒、啤酒、面包 等食品中[1, 2, 3]。目前体外研究已经发现OTA具有肾 毒性、肝毒性、神经毒性、免疫毒性等生物学效 应,OTA可以抑制人肾小管上皮细胞的生长[4]、诱 导肝细胞DNA的氧化应激损伤[5]、损伤海马神经元 细胞[6]、扰乱胃肠道黏膜屏障、破坏胃肠道黏膜细 胞间的紧密连接和信息传递[7]、抑制体外培养的T 和B淋巴细胞增殖,并且可以减少IL-2和IL-2受体 的产生[8]。此外,动物实验还发现,OTA具有致畸 性、致突变性和致癌性,如孕鼠灌喂OTA后可以 引起胎鼠脑积水、小眼畸型、肾发育不全[9];长期 食用OTA污染的饲料,可以诱发F344/N大鼠出现 肾脏肿瘤、肝脏肿瘤、前胃上皮细胞增生、乳腺 纤维腺瘤等[10]。1993年国际癌症研究中心将OTA 列为“可能的人类致癌物”[11]。
河北省赞皇县是我国胃癌高发区之一,胃癌 年均死亡率超过59/10万[12, 13]。2006年,我们对 当地居民粮食中OTA的污染状况进行了现场调 查,发现当地居民食用的小麦中OTA的检出率为 45.16%,平均含量为2.41 μg/kg,明显高于国内 其他地区的检测结果(我国六省区OTA平均污染 浓度0.60 μg/kg),而且当地居民OTA的日暴露量 (1.17 μg/kg)明显高于世界卫生组织/粮农组织联 合专家委员会(joint FAO/WHO rxpert vommittee on good sdditives,JECFA)暂定的每周容许摄入 量(100 ng/kg)[14]。鉴于OTA在胃癌高发区粮食 中的高污染以及对人类的可能致癌性,使得探 讨OTA与胃癌发生的可能关系变得非常重要。因 此本部分研究首先利用微核试验初步观察OTA对 GES-1细胞染色体的损伤情况;接着利用染色体核 型分析进一步观察OTA作用后GES-1细胞染色体的 畸变情况,为揭示OTA暴露与人胃黏膜损伤乃至 胃癌发生的可能关系提供科学依据。 1 材料与方法 1.1 材料
永生化人胃黏膜上皮细胞(GES-1)购自北 京肿瘤研究所;OTA购自德国ALEXIS公司,用甲 醇(色谱纯)将其溶解,配制成10 g/L的储存液, 4℃保存,临用时稀释;DMEM培养液购自美国 Gibco公司;新生牛血清购自四季青公司;秋水仙 碱购自上海化学试剂厂;冰乙酸购自天津市化学 试剂三厂;甲醇购自天津市凯通化学试剂公司; 胰蛋白酶购自美国Sigma公司。 1.2 实验分组
取对数生长期GES-1细胞,随机分组,实验组 给予OTA,使其终浓度分别为5、10、20 μmol/L; 同时设溶剂对照组(甲醇,终浓度为0.08%)。各 组细胞处理后继续培养24 h,然后收集进行微核试 验和染色体核型分析。 1.3 微核试验检测OTA对GES-1细胞微核率的影响
5、10 、20 μmol/L OTA处理GES-1细胞24 h 后,胰酶消化收集细胞 ,1500 r/ min 离心5 min, 细胞沉淀用 0.075 mol/ L KCl 低渗液处理,然后 用3:1甲醇冰醋酸固定液固定3次,最后用少量固 定液将细胞沉淀制成悬液,滴2滴于冰冻的洁净玻 片上,室温下自然干燥,用吉姆萨(Giemsa)染 色,光学显微镜下观察,在双盲条件下计数1 000 个细胞中含有微核的细胞数,微核率(%)=含微 核细胞数/观察的细胞总数×100%。 1.4 染色体核型分析检测OTA对GES-1细胞有丝分裂中期染色体核型的影响
不同浓度OTA处理GES-1细胞24 h后,加入秋 水仙素(终浓度为0.05 μg/ml),继续培养3 h,1 000 r/min离心10 min收集细胞,吸上清液,逐滴加入 预热至37℃的 KCl (0.075 mol/L),轻轻混匀,37℃ 水浴孵育40 min,新鲜固定液(3:1甲醇冰醋酸) 固定。取冷冻的载玻片,距玻片15 cm高度处向玻 片滴1~2 滴细胞悬液,于75℃烤箱中,烤片3 h。 Giemsa染色,中性树胶封片。每组选择100个染色 体分散良好、形态清晰的中期分裂相,油镜下观 察、记录染色体数目、染色体形态异常(如:双 着丝粒、间隙、断裂、环状)等染色体畸变类型 及频度,并与溶剂对照组比较。 1.5 统计学方法
数据采用SPSS 13.0软件包进行统计学处理, 以P<0.05为差异有统计学意义。微核实验数据用 (x±s)表示,进行单因素方差分析(ANOVA), 对所测定结果进行正态性及方差齐性检验。染色 体畸变率各组之间的比较采用χ2检验。 2 结果 2.1 OTA对GES-1细胞微核率的影响
光学显微镜下可见GES-1细胞呈圆形,胞核 和胞质显色清楚。对照组细胞很少出现微核[微核 率为(1.23±0.27)%],见图1 A;随着OTA处理浓 度的增加,出现微核的细胞数逐渐增多,见图 1B、 1C、1D。随着OTA处理浓度的增加,GES-1细胞微 核率逐渐增加,其中10 μmol/L和20 μmol/L OTA处 理组的细胞微核率分别为(2.90±0.54)% 和(3.84± 1.06)%,明显高于溶剂对照组[(1.23±0.27)%, P<0.05],提示OTA处理可以诱导GES-1细胞染色 体的损伤。
GES-1细胞经5、10和20 μmol/L OTA处理24 h 后,结构异常的染色体与溶剂对照组相比明显增 多,尤其以20 μmol/L OTA处理组增多明显。其 中,染色体结构异常(间隙、断裂、缺失、环状染 色体)的发生率随OTA处理浓度的增加而增多,见 图 2。5、10和20 μmol/L OTA处理组染色体总畸变 率分别为14%、20%和24%,明显高于溶剂对照组 (4%,P<0.05),见表 1。而且还发现,在20 μmol/L OTA处理组中,一个细胞有丝分裂中期的染色体 可以同时发生两种或三种畸变。该结果进一步证 实OTA处理可以诱导GES-1细胞染色体畸变。
不同浓度OTA处理24 h后GES-1细胞中期分裂 相出现的双着丝粒、间隙、断裂、环状等异常染 色体结构,见图 2。
前期研究中发现OTA可以诱导GES-1细胞发生 氧化DNA双链损伤以及细胞周期紊乱[15, 16]。DNA 被认为是致癌性物质攻击的主要靶分子,而DNA 双链断裂是最严重的DNA损伤形式,它能够使细 胞的正常生命活动乃至生存都受到严重威胁,是 发生基因突变、染色体断裂的主要原因之一。因 为断裂DNA双链如果未被修复或进行了不恰当修 复,可能会导致染色体缺失、重排、转位和倒置 等现象,进而基因组会发生不稳定,易于形成肿 瘤[17]。研究表明,很多致癌物,包括致癌性真菌 毒素都可以引起细胞DNA损伤以及染色体畸变: 致癌性细菌幽门螺旋杆菌可以诱导细胞发生DNA 损伤以及染色体畸变[18];黄曲霉毒素能够诱导啮 齿类动物和人类细胞染色体畸变,染色体的姐妹染 色单体互换,染色体断裂等[19]。
已有研究发现:OTA可以诱导大鼠肾细胞微 核形成[20];同时OTA诱导的染色体畸变可能和巴 尔干肾病的发生有关[21]。但目前有关OTA对人胃 黏膜上皮细胞染色体影响的研究国内外未见报 道。本研究采用微核试验和染色体核型分析深入 探讨了不同浓度OTA处理对GES-1细胞染色体的影 响。微核试验结果发现,在0~20 μmol/L的浓度范 围内,随着OTA处理浓度的增加GES-1细胞微核形 成率逐渐增加,尤其以10和20 μmol/L OTA处理组 细胞微核形成率增加明显,提示OTA处理可以诱 导GES-1细胞染色体的损伤。微核试验虽然操作快 速、简便,但这种试验方法有其局限性,只能间 接反映染色体的损伤程度,并不能直观的观察染 色体的损伤类型。我们采用染色体核型分析进一 步观察了OTA对GES-1细胞染色体畸变率的影响, 结果发现GES-1细胞经不同剂量OTA处理后,各种 类型的畸变染色体(双着丝粒染色体、染色体间 隙、染色体断裂、环状染色体和多倍体)的发生 率均较溶剂对照组有所增加,较大剂量OTA处理 后GES-1细胞染色体总畸变率明显增多。综上可见 OTA可以增加GES-1细胞微核的形成,诱导GES-1 细胞染色体发生畸变。
近来有学者通过大样本调查研究发现,人外周 血淋巴细胞的微核发生率可以预测癌症发生的风 险,因此微核被认为是细胞癌变的早期事件[22]。而 染色体畸变则被认为是肿瘤发生的一个重要因素。 染色体在畸变过程中会发生染色体重排和基因扩 增,进而使细胞发生癌变。Gandhi等[23]认为人乳头 状甲状腺癌的发生是由于某一特定位点的染色体发 生易位而形成的。de Klein等[24]认为9号染色体易位 可以使癌基因异常激活,从而导致慢性粒细胞白血 病的发生。本研究结果发现OTA可以增加人胃黏膜 上皮细胞的微核发生率,同时导致细胞染色体出现 各种类型的畸变。研究结果表明OTA可能会通过导 致人胃黏膜上皮细胞染色体畸变,进而使细胞发生 恶性转化。因此,我们认为粮食中OTA的高污染可 能会对胃癌高发区居民胃癌的发生发挥一定作用, 这应当引起肿瘤防治工作者的重视。本研究加深 了对OTA生物效应的认识,为OTA暴露的合理处置 奠定了科学基础,为胃癌的合理防治提供了科学依 据,对提高我国农村居民,特别是胃癌高发区居民 食品安全水平具有重要意义。
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