Three Gorges University, Yichang Central People’s Hospital,Yichang 443003,China
胸腔积液是内科常见病及多发病,其病因主 要分为结核及恶性肿瘤。机体保护性免疫反应中 细胞免疫相比体液免疫占主导地位,在清除癌变 组织和病原菌入侵中发挥重大作用,其中T细胞在 细胞免疫中居中心地位。按照表面标志,T细胞主 要分CD8+的细胞毒T细胞(cytotoxic T cell,CTL)及 CD4+的辅助T细胞(helper T cell,T helper),目前 CD4+T细胞的新亚群不断被发现,众多研究表明 其均不同程度地参与了疾病的免疫反应,本文拟从 恶性胸腔积液的角度入手对CD4+T的研究进展作 一综述。1 CD4+T细胞亚群1.1 Th1细胞
初始CD4+T细胞在白介素IL-12作用下分化为 Th1细胞,在此过程中IL-4的作用尤为重要,当处 于IL-4缺乏的微环境时,初始CD4+T细胞分化为 表达IFN-γ的Th0细胞,进而分化为Th1细胞,主要 分泌IL-2、干扰素IFN- γ和肿瘤坏死因子TNF-β等 细胞因子,其中IFN-γ可促进Th1细胞自身的分化 成熟,还可抑制初始CD4+T细胞向Th2分化[1]。 IFN-γ是参与排斥反应的重要效应分子,研究表明其 有抗病毒、抑制肿瘤细胞生长、促进B细胞产生抗 体、活化巨噬细胞、增强自然杀伤性细胞的细胞 毒性等作用。Th1细胞与迟发型超敏反应性T细胞 和细胞毒性T淋巴细胞的增殖分化、成熟有密切关 系,可增强杀伤细胞的不良作用,激发迟发型超敏 反应,介导细胞免疫应答,参与了抗感染、器官移 植排斥反应和自身免疫反应性疾病的免疫调节过 程[2]。1.2 Th2细胞
微环境中高水平的IL-4可促使初始CD4+T细 胞分化为Th2细胞,主要分泌IL-4、IL-5、IL-6、IL-10和IL-13,其中IL-4,IL-10以自分泌的形式促进 自身的进一步分化和成熟,并抑制初始CD4+T细 胞向Th1细胞的分化,同时与其他各种因子形成一 个调节网络。Th2细胞主要介导体液免疫和过敏反 应,能促进B细胞、肥大细胞、胸腺T细胞的增殖 和分化,促进B细胞成熟并分泌IgG和IgE抗体,增 强抗体介导的体液免疫应答[3]。众多研究表明机体 在病变情况下常常表现为Th1和Th2细胞中某一亚 群功能升高,另一亚群功能降低,从而出现Th1/ Th2比值变化,该现象被称为Th1/Th2漂移,关于 两者平衡在疾病的作用一直倍受关注。1.3 Treg细胞细胞
调节性T细胞(regulatory T cell,Treg)分为固有 Treg细胞和适应性Treg细胞。前者来源于胸腺,由 初始CD4+T在TGF-β单独诱导下分化而来;后者 由外周CD25-T细胞经抗原刺激诱导而来[4]。小鼠 中叉头状/翅膀状螺旋转录因子(forkhead/winged helix transcription factor,Foxp3)是Treg细胞特异性核 转录因子,在人类则称为FOXP3,可以下调IL-2、 TNF、GM-SCF等细胞因子,并上调IL-10、血红 素加氧酶-1的表达而发挥免疫抑制功能[5]。Treg细 胞在正常人体外周血单个核细胞中所占比例约为 0.5%,细胞表面高表达GITR(糖皮质激素诱导的肿 瘤坏死因子受体)、CTLA-4(细胞毒性T淋巴细胞抗 原-4)、CD4、CD45RO、白介素受体IL-23R、趋化 因子受体CCR4、CCR6、CD122(IL-2受体链)以及 Toll样受体等[6],但像CD25一样,它们在Treg细胞 的表达并不是特异性的。Treg细胞主要分泌抑制性 细胞因子如IL-10、TGF-β等,具有维持机体免疫 功能动态平衡、诱导自身耐受、调节免疫应答、 抑制移植排斥反应等重要功能。 1.4 Th17细胞
Th17细胞的特征性转录因子为孤独核受 体,在小鼠中称为ROR-γt(retinoid-related orphan receptor γt),人体中称为RORC。TGF-β和IL-6是诱 导初始CD4+T细胞向Th17细胞分化的最关键的细 胞因子,微环境中两者协同作用可经由STAT3通 路活化ROR-γt,促进Th17细胞分化并分泌细胞因 子IL-21、IL-23,其中IL-21可与TGF-β协同刺激、 诱导幼稚CD4+T细胞进一步向Th17细胞分化,从 而以自分泌的形式促进自身的扩增,IL-23作用于 已分化好的Th17细胞,促进其成熟,并起到稳定 和维持Th17细胞特性的作用[7]。Th17细胞可分泌 IL-17、IL-21、IL-22、IL-6、TNF-α等细胞因子, 细胞表面高表达白介素23受体(IL-23R)和趋化因子受体CCR20、CCR22、CCR6、CCR4等。Th17细 胞发挥的生物学功能以IL-17为主,包括六个家族 成员,可诱导纤维母细胞、内皮细胞和上皮细胞 编码产生促炎因子如肿瘤坏死因子(TNF)、IL-6、 IL-1、IL-8、粒细胞集落刺激因子(G-CSF)、抗菌 蛋白及金属蛋白酶等[8],在炎症早期介导免疫细 胞的局部聚集及活化,并参与了器官移植免疫排 斥、自身免疫疾病和肿瘤发病等多个重要生理或 病理进程。1.5 Th9细胞
Th9细胞是以分泌IL-9、IL-10为主的CD4+T亚 群,其分化机制主要有两种,一是由IL-4激活Stat6 通路,诱导产生GATA-3,并在TGF-β的共同刺激下 由初始CD4+T分化而来;二是单独由TGF-β作用于 Th2细胞亚群转化而来[9]。Th9细胞分泌的细胞因 子IL-9以自分泌正反馈机制进一步促进其分化,体 外实验中许多细胞因子,比如IL-1β、IL-6、IL-10、 IL-12、IL- 21、IFN-α、IFN-β也能促进Th9细胞的 分化。IL-9可作用于不同的炎症细胞和组织细胞, 产生不同的生物学效应,如促进T细胞和肥大细胞 增殖,增加肥大细胞表面FcεRIα的表达和产生炎 症介质的量,使得肥大细胞对变应原作出反应, 主要在应答病原微生物感染的情况发生效应[10]。 此外还可直接作用于B细胞(可能为B1亚群),在Ig 合成的调控中发挥重要的作用。在炎性疾病的研 究中发现IL-9可通过抑制嗜酸性粒细胞的凋亡、促 进其成熟来增加组织中的嗜酸性粒细胞数,还可 诱导中性粒细胞产生和释放IL-8,介导炎性反应[11]。 2 恶性胸腔积液中CD4+T细胞的变化及可能机制2.1 Th1细胞与恶性胸腔积液
Ghayumi等[12]研究发现在恶性胸腔积液中Th1 细胞相关因子的含量与肿瘤转移部位有关,其中 肺癌致恶性胸腔积液中IFN-γ含量(4.2±8.7) pg/ml 低于胸外肿瘤(16.1±41.9) pg/ml。Okamoto等[13]研 究发现恶性胸腔积液中IFN-γ、IL-12含量低于结核 性胸腔积液。由于IL-12可促进Th1细胞分化,并 可协同IL-18促进IFN-γ的分泌,为进一步探讨恶 性胸腔积液中低水平表达IFN-γ的机制,研究者提 取恶性胸腔积液中的T淋巴细胞进行体外培养,分 别给予IL-12、IL-18单独或协同刺激24小时后检测 IFN-γ的含量,发现单独刺激效果不明显,而两者 协同刺激作用明显大于单独刺激,提示恶性胸腔 积液低水平IL-12可能是IFN-γ表达较低的原因。进 一步研究发现,单核细胞在IL-18的刺激下可分泌IFN-γ,但体外实验发现在不同浓度IL-18培养液中 加入或不加入恶性胸腔积液对IFN-γ的表达无明显 差别,说明恶性胸水中不存在影响IFN-γ分泌的可 溶性因子。2.2 Th2细胞与恶性胸腔积液
Th2细胞分泌的细胞因子主要包括IL-10、IL-4 等,在恶性胸腔积液中Th2细胞相关因子的含量与 肿瘤类型有关。DeLong等[14]研究表明胸膜间皮瘤 性胸腔积液中IL-10含量(76±18) pg/ml高于小细胞 肺癌(28±8) pg/ml及乳腺癌(33±7) pg/ml。Ghayumi 等[12]研究发现在恶性胸腔积液中,肺癌致恶性 胸腔积液中IL-4、IL-10含量(10.9±15.8) pg/ml、 (21.6±19.4)pg/ml高于胸外肿瘤(6.0±7.4) pg/ml、 (32.4±44.7)pg/ml,说明不同部位、不同肿瘤来 源所引起的机体局部Th2细胞免疫反应存在差异。2.3 Treg细胞与恶性胸腔积液
Yang等[15]研究发现恶性胸腔积液中Treg细胞高 于同源外周血,并且胸水中Treg细胞的表达与Th1 细胞、Th17细胞均呈负相关,但在外周血中的表 达无明显相关性。此外,研究者进一步探索了胸 腔积液Treg细胞升高可能的机制,发现恶性胸腔 积液中趋化因子CCL22水平明显高于同源外周血, 且胸水中肿瘤细胞、巨噬细胞和T淋巴细胞也能产 生CCL22,而胸水中Treg细胞表面相关趋化受体 CCR4的表达高于同源外周血[16]。为证实CCL22-CCR4趋化轴介导了胸水Treg细胞的局部聚集作 用,研究者在体外利用Transwell小室分析发现恶 性胸腔积液对淋巴细胞有趋化作用,且抗CCL22 单克隆抗体可以抑制这种趋化作用,说明恶性胸 腔积液中趋化因子CCL22水平的升高与Treg细胞浸 润到胸膜腔中有关。Delong等[14]研究发现在恶性 胸腔积液中,不同肿瘤所导致的胸水中Treg细胞含 量不同,其中小细胞肺癌(15.0±5.9)或乳腺癌(15.9± 3.2)高于胸膜间皮瘤(7.8±6.8)。2.4 Th17细胞与恶性胸腔积液
Ye等[17]发现肺癌胸膜转移的恶性胸腔积液中 Th17占总CD4+T细胞的比例(3.6793±0.50878)明显 高于同源患者外周血(0.5886±0.08524)(P=0.000)。 进一步研究其升高机制,研究者通过流式检测发 现Th17细胞大量表达趋化受体CCR4、CCR6, 通过免疫磁珠分选纯化Th17细胞,体外利用 Transwell系统检测发现恶性胸腔积液对Th17细 胞有趋化作用,在加入CCR4、CCR6相应配体 CCL22、CCL20的单克隆抗体后可以阻断其趋化 效应,提示Th17从外周血浸润至胸膜腔的过程很 可能经由CCR4-CCL22和CCR6-CCL20趋化轴介 导。另外,也有研究[18]发现恶性胸腔积液中Treg 与Th17细胞表达呈负相关,研究者进一步纯化 并体外培养Treg及Th17细胞,发现Treg细胞表面 高表达的LAP含量与Th17细胞数成反比,且在培 养液中加入抗LAP抗体后Th17细胞数增加。提示 Th17/Treg细胞的平衡可能受LAP相关调节机制的 影响。除了局部微环境的免疫调节功能以外,恶 性胸腔积液中Th17细胞的含量还与患者的生存率 成正比,提示Th17细胞浸润情况与患者预后密切 相关。2.5 Th9细胞与恶性胸腔积液
Ye等[19]实验团队利用ELISA检测恶性胸腔积 液中IL-9的含量(59.3±12.7) pg/ml明显高于外周血 (6.5±0.4) pg/ml(P<0.001),流式细胞仪检测恶性胸 腔积液中Th9细胞占CD4+T细胞的比例(2.3±0.1)也 高于同源外周血(0.6±0.1)(P<0.001)。为进一步探讨 升高机制,研究者在体外培养过程中发现IL-1β、 IL-4、TGF-β都可促进Th9细胞的表达,而IFN-γ 则可以抑制Th9细胞的表达。当加入提纯的Treg细 胞共培养时,发现Treg细胞及Th9细胞的表达均增 加,说明两者有协同刺激作用。研究还发现肺癌 细胞A549、SK-MES-1株表面均高表达细胞因子受 体IL-9R、IFN-γR1、IL-17R,在培养肿瘤细胞时 加入IL-9或IL-17可以促进其增长,而IFN-γ则有抑 制作用,两种效应都可以通过加入IL-9、IL-17、 IFN-γ的抗体来逆转。体外实验中还发现IL-9对 肿瘤细胞有局部趋化作用,而加入抗IL-9抗体后 Transwell小室局部肿瘤细胞数减低,提示Th9细胞 可能有促进肿瘤生长的作用,还可能介导了肿瘤 细胞浸入胸膜腔的机制,并且恶性胸水中Th9细胞 的表达与患者生存率及疾病严重程度成反比。 3 结语
CD4+T细胞广泛参与了人体的疾病免疫调 节,随着新亚群的不断发现,以往对于辅助性 CD4+T细胞的认识越来越深入。胸膜疾病的免疫 学发生、发展机制仍不明确,如CD4+T细胞新亚 群在胸腔积液局部微环境中究竟怎样变化,对疾 病的诊断及预后如何仍待进一步研究。相信通过 对局部微环境中细胞分化调节的研究可为胸膜疾 病免疫学发病机制的研究提供帮助,为疾病的诊 断和治疗提供新的靶点和途径。
[1] | Mishra KP, Yadav AP, Shweta, et al. Ship-borne journey inducesTh1 cytokines level in antarctic summer expeditioners[J]. Immunol Invest,2010,39(7):770-9. |
[2] | Kim C, Jay DC, Williams MA. Stability and function of secondaryTh1 memory cells are dependent on the nature of the secondary stimulus[J]. J Immunol,2012,189(5):2348-55. |
[3] | Nevala WK, Vachon CM, Leontovich AA, et al. Evidence of systemic Th2-driven chronic inflammation in patients with metastatic melanoma[J]. Clin Cancer Res,2009,15(6):1931-9. |
[4] | Dunham RM, Thapa M, Velazquez VM, et al. Hepatic stellate cells preferentially induce Foxp3+ regulatory T cells by production of retinoic acid[J]. J Immunol,2013,190(5):2009-16. |
[5] | Savage PA, Malchow S, Leventhal DS. Basic principles of tumorassociated regulatory T cell biology[J]. Trends Immunol,2013,34 (1):33-40. |
[6] | Geiger TL, Tauro S. Nature and nurture in Foxp3(+) regulatory T cell development, stability, and function[J]. Hum Immunol,2012, 73(3):232-9. |
[7] | Yang XP, Ghoreschi K, Steward-Tharp SM, et al. Opposing regulation of the locus encoding IL-17 through direct, reciprocal actions of STAT3 and STAT5[J]. Nat Immunol,2011,12(3):247-54. |
[8] | Bettelli E, Korn T, Oukka M,et al. Induction and effector functions of T(H)17 cells[J]. Nature,2008,453(7198):1051-7. |
[9] | Liu Z, Fan H, Jiang S. CD4(+)T-cell subsets in transplantation[J]. Immunol Rev,2013,252(1):183-91. |
[10] | Schmitt E, Bopp T. Amazing IL-9: revealing a new function for an “old” cytokine[J]. J Clin Invest,2012,122(11):3857-9. |
[11] | Lu Y, Hong S, Li H, et al. Th9 cells promote antitumor immune responses in vivo[J]. J Clin Invest,2012,122(11):4160-71. |
[12] | Ghayumi MA, Mojtahedi Z, Fattahi MJ. Th1 and th2 cytokine profiles in malignant pleural effusion[J]. Iran J Immunol,2011,8 (4):195-200. |
[13] | Okamoto M, Hasegawa Y, Hara T, et al. T-helper type 1/T-helper type 2 balance in malignant pleural effusions compared to tuberculous pleural effusions[J]. Chest,2005,128(6):4030-5. |
[14] | DeLong P, Carroll RG, Henry AC, et al. Regulatory T cells and cytokines in malignant pleural effusions secondary to mesothelioma and carcinoma[J]. Cancer Biol Ther,2005,4(3):342-6. |
[15] | Yang WB, Ye ZJ, Xiang F, et al. Th17/Treg imbalance in malignant pleural effusion[J]. J Huazhong Univ Sci Technol[Med Sci],2013,33(1):27-32. |
[16] | Qin XJ, Shi HZ, Liang QL, et al. CD4+CD25+ regulator T lymphocytes in tuberculous pleural effusion[J].Chin Med J(Engl), 2008,121(7):581-6. |
[17] | Ye ZJ, Zhou Q, Gu YY, et al. Generation and differentiation of IL-17-producing CD4+T cells in malignant pleural effusion[J]. J Immunol,2010,185(10):6348-54. |
[18] | Ye ZJ, Zhou Q, Zhang JC, et al. CD39+ regulatory T cells suppress generation and differentiation of Th17 cells in human malignant pleural effusion via a LAP-dependent mechanism[J].Respir Res,2011,12:77. |
[19] | Ye ZJ, Zhou Q, Yin W, et al. Differentiation and immune regulation of IL-9-producing CD4+ T cells in malignant pleural effusion[J].Am J Respir Crit Care Med,2012,186(11):1168-79 |