肿瘤防治研究  2014, Vol.41 Issue (2): 168-172.   PDF    
肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体治疗脑胶质瘤的研究进展
范存刚,张庆俊    
100044 北京, 北京大学人民医院神经外科
摘要:肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand, TRAIL)能够特异性杀伤肿瘤细胞而不损伤正常组织,是脑胶质瘤基因治疗的理想策略。新近发现 以纳米粒子和干细胞作为载体能提高TRAIL的呈递效率,与蛋白酶抑制剂、化疗药物、甘珀酸钠、 miRNA和PI3-激酶/mTOR抑制剂等联合使用有助于克服胶质瘤对TRAIL的耐药性,增强TRAIL的抗肿 瘤功效。由此可见,TRAIL在脑胶质瘤的治疗中具有较广泛的应用前景。
关键词: 肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体     胶质瘤     基因治疗     干细胞     纳米粒子    
Progress in TRAIL-based Therapy for Glioma
FAN Cungang, ZHANG Qingjun    
Department of Neurosurgery, Peking University People’s Hospital, Beijing 100044, China
Abstract:Tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL), which can specifically kill tumor cells without damaging normal tissue, has been identifi ed as an ideal gene therapy strategy for glioma. Recent studies revealed that both nanoparticles and stem cells could serve as carriers to improve the delivery effi ciency of TRAIL. In addition, the combination of protease inhibitors, chemotherapy drugs, carbenoxolone sodium, miRNA, PI3-kinase/mTOR inhibitor, and etc, could overcome the glioma resistance to TRAIL and enhance the anti-tumor effect of TRAIL. To sum up, TRAIL shows promising prospects in the treatment of glioma.
Key words: Tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL)     Glioma     Gene therapy     Stem cells     Nanoparticles    

0 引言

肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand, TRAIL)能够特异性杀伤肿瘤细胞而不损伤正常 组织,是较为理想的脑胶质瘤基因治疗策略。然 而,重组TRAIL的半衰期较短、难以有效通过血 脑屏障且大量使用有潜在毒性,病毒载体介导 TRAIL有诱发宿主免疫排斥反应的风险,加之部 分胶质瘤细胞对TRAIL存在抵抗[1],促使人们探索 以干细胞或纳米粒子等新型载体运输TRAIL并通 过联合其他药物克服胶质瘤细胞对TRAIL耐药性 的新策略,以提高TRAIL治疗胶质瘤的疗效。 1 TRAIL的特点、受体分类及作用机制 1.1 TRAIL的特点

TRAIL是一种Ⅱ型跨膜蛋白,为肿瘤坏死因 子家族成员之一,其突出优点是能够选择性诱导 肿瘤细胞凋亡但对正常细胞没有任何毒副作用。 1.2 TRAIL受体分类

TRAIL通过与细胞膜受体结合诱导细胞凋 亡。目前已发现5种能与TRAIL特异性结合的受 体:TRAIL-R1和TRAIL-R2均含有死亡结构域, 与TRAIL结合后可诱导肿瘤细胞凋亡,故分别 称为死亡受体(death receptor,DR)4和DR5; TRAIL-R3和TRAIL-R4无死亡结构域或死亡结构 域不完整,无法诱导细胞凋亡,故分别称作诱骗 受体(decoy receptor,DcR)1和DcR2;骨保护素 (osteoprotegerin,OPG)是一种与TRAIL亲和力较 低的特殊受体[2]1.3 TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡的信号通路

TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡的机制主要涉及两 个通路:(1)Caspase和DR相关的细胞凋亡通路 TRAIL诱导DR4和DR5三聚体化,形成“TRAILDR- 接头蛋白-半胱天冬酶原”的死亡诱导信号复合 物,使半胱天冬酶原水解为有活性的Caspase 8, 进而激活Caspase级联反应,募集和激活Caspase家 族下游信号传导酶,最终激活效应酶Caspase 3并 诱导细胞凋亡。(2)线粒体相关的细胞凋亡信号 通路在该通路中,Caspase 8被激活后通过线粒体 释放细胞色素C,进而激活Caspase 3并诱导细胞发 生凋亡[3]1.4 正常细胞或肿瘤干细胞抗TRAIL诱导凋亡的 机制

TRAIL选择性诱导肿瘤细胞凋亡的机制主要 与肿瘤细胞和正常细胞内DcR的表达水平的差异有 关。DR4和DR5在肿瘤细胞和正常细胞中的表达水 平相当,DcR1和DcR2虽在各种正常组织内广泛表 达但在肿瘤细胞中却低表达甚至不表达。因此, 正常细胞表达的DcR1和DcR2能与DR4和DR5竞争 性结合TRAIL,使TRAIL难以通过死亡结构域与 接头蛋白结合,无法激活Caspase 8和Caspase级联 反应,故不能诱导正常细胞凋亡。但肿瘤细胞内 缺乏DcR,故TRAIL能与DR4和DR5结合,从而特 异性杀伤肿瘤细胞[4]2 重组可溶性TRAIL治疗脑胶质瘤

鉴于胶质瘤高表达DR, 低表达或不表达 DcR,有研究者开始探讨以重组可溶性TRAIL治 疗对常规治疗方法存在抵抗的恶性胶质瘤。他 们发现中等浓度TRAIL能使TP53野生型的U87 和A172、TP53突变的T98G 以及TP53删除的 LN-Z308等胶质瘤细胞株的细胞数量显著减少,经 腹腔给药后能显著延长U87颅内移植瘤的荷瘤裸鼠 的生存期且具有TRAIL剂量依赖性。其中,以30 mg/(kg·d)TRAIL治疗组的荷瘤小鼠生存期超过 120天,均未发现肿瘤残留和明显毒性反应[5],故 能够选择性诱导胶质瘤细胞凋亡的可溶性TRAIL 有望成为治疗胶质瘤的新策略。 3 纳米粒子偶联的TRAIL治疗

缺乏有效的给药方法是严重阻碍TRAIL疗效 的重要因素之一。基于纳米粒子可作抗癌药物的 有效运载工具,Perlstein等[6]将偶联于纳米粒子的 TRAIL与游离的重组TRAIL治疗脑胶质瘤的疗效 进行比较。他们发现前者对各种人胶质瘤细胞系 和胶质瘤干细胞诱导凋亡的活性更强,与γ-照射或 硼替佐米联合应用还能致敏耐TRAIL的胶质瘤干 细胞。移植于裸鼠模型后,偶联TRAIL的纳米粒 子能特异性地追踪胶质瘤,显著增加胶质瘤细胞 的凋亡并缩小肿瘤体积,显著延长荷瘤小鼠生存 期,提示以纳米粒子为载体能增强TRAIL的促胶 质瘤凋亡作用。 4 干细胞介导的TRAIL治疗 4.1 神经干细胞为载体的TRAIL治疗

基于神经干细胞向胶质瘤趋化性迁移的特 征,Ehtesham等[7]将基因修饰后分泌TRAIL的神经 干细胞植入人胶质母细胞瘤异种移植瘤内。结果 发现瘤床及卫星灶的瘤细胞均显著凋亡,肿瘤生 长也显著受抑。以同时表达萤火虫荧光素酶和分 泌型TRAIL的小鼠神经前体细胞治疗人胶质瘤小 鼠模型的研究表明,携带荧光标记的神经前体细 胞不仅可作为呈递TRAIL的有效载体,还可用于 评估小鼠的胶质瘤负荷[8]4 . 2 胚胎干细胞源性星形胶质细胞为载体的 TRAIL治疗

新近有研究者对胚胎干细胞源性星形胶质 细胞作为胶质瘤基因 治疗载体的可行性进行了 研究。他们将表达TRAIL的胚胎干细胞源性星 形胶质细胞与人恶性胶质瘤细胞A172进行共培 养,结果发现胶质瘤细胞的存活率显著下降(P <0.001)、凋亡率显著增加(P <0.005),其促凋 亡效果优于重组TRAIL[9]。将上述细胞分单次或 两次注射至裸鼠的人胶质瘤A172模型48小时后肿 瘤体积分别缩小14%和31%,7天后肿瘤发生显著 坏死,仅在外围有个别存活的肿瘤细胞[10]。这些 研究表明,胚胎干细胞源性星形胶质细胞可作为 TRAIL治疗胶质瘤的载体。 4.3 人骨髓间充质干细胞为载体的TRAIL治疗

新近研究显示,人骨髓间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)具有与神经干细胞相似的趋胶质 瘤能力[11],经基因修饰后能分泌重组TRAIL的人 骨髓MSCs能诱导胶质瘤细胞系乃至CD133阳性 胶质瘤干细胞发生凋亡,移植于荷瘤小鼠后还能 向胶质瘤定向迁移[12]。在注射到U87胶质瘤异种 移植小鼠模型的同侧半球后,表达可溶性TRAIL 的人骨髓MSCs能向胶质瘤定向迁移、释放可溶 性TRAIL、使肿瘤细胞凋亡数目显著增加、肿瘤 生长明显受抑(缩小81.6%)和荷瘤小鼠生存期 显著延长[13]。还有研究显示,经静脉注射以全长 TRAIL修饰的人骨髓MSCs诱导胶质瘤细胞凋亡 的疗效优于可溶性TRAIL治疗组[14]。这些研究提 示,人骨髓MSCs介导的TRAIL治疗可发挥干细胞 特异性趋瘤能力和TRAIL特异性杀伤肿瘤细胞的 双重作用,显著提高治疗的靶向性。 4.4 人脐血间充质干细胞介导的TRAIL治疗

人脐血MSCs具有无创获取、增殖能力强、 感染风险低、免疫源性弱和趋胶质瘤能力强等优 点[15],是较为理想的MSCs来源。经细胞渗透肽 4HP4[16]转染后携带分泌型三聚体TRAIL的人脐血 MSCs能向胶质瘤定向迁移、使肿瘤生长显著受抑 并使荷瘤小鼠生存期显著延长,其效果较直接注 射分泌型三聚体TRAIL基因修饰的腺病毒载体更 好。随后研究显示,放疗能使胶质瘤细胞中IL-8和 人脐血MSCs 中相应受体CXCR1表达上调从而增 强人脐血MSCs趋胶质瘤能力,还能使胶质瘤细胞 中死亡受体5上调,同时诱导Caspase活化从而促进 胶质瘤细胞凋亡,提示放射治疗能通过双重机制 与TRAIL发挥抗胶质瘤的协同效应[17]。 双重作用,显著提高治疗的靶向性。 4.5 人脂肪间充质干细胞介导的TRAIL治疗

人脂肪MSC易于获取、便于基因修饰且可进行自 体移植,是胶质瘤基因治疗的理想细胞载体[18]。以核 转染后表达TRAIL的人脂肪MSCs治疗脑干胶质瘤 的研究显示,肿瘤体积缩小56.3%(P <0.001)、 细胞凋亡增加3.03倍(P<0.05)、动物生存期延长 3倍以上(P <0.0001),而正常脑实质却无任何损 伤[19]。该研究表明,较病毒载体更安全的核转染 技术能使人脂肪MSCs高效表达TRAIL并发挥良好 的抗胶质瘤功效。 4.6 其他来源干细胞介导的TRAIL治疗

新近研究显示,人脐带MSCs具有向胶质瘤特 异性靶向迁移并在瘤内广泛分布的能力。经侧脑 室注射的人脐带MSCs能向胶质瘤定向迁移,分布 于瘤床、肿瘤与正常脑组织交界处并“追踪”浸润 至正常脑实质的“卫星”瘤灶[20]。鉴于人脐带组织 为分娩后的废弃组织,细胞分离过程不会造成任 何痛苦和风险,操作简便、细胞数量大、增殖能 力强,细菌和病毒感染的风险更低等优势[21],有 必要进一步研究人脐带MSCs对脑胶质瘤的治疗效 果。 5 TRAIL与其他治疗联合应用 5.1 蛋白酶抑制剂联合TRAIL治疗

Unterkircher等[22]对蛋白酶体抑制剂硼替佐米 影响TRAIL诱导细胞凋亡信号通路的情况进行了 研究。结果表明硼替佐米能通过增加tBid稳定性 和促进线粒体凋亡使胶质母细胞瘤(和胶质瘤干 细胞)对TRAIL更加敏感。此外,硼替佐米联合 表达膜结合型TRAIL的神经干细胞治疗胶质瘤的 研究也表明,硼替佐米治疗能提高胶质瘤细胞对 TRAIL的敏感度,增强其促进肿瘤细胞凋亡并显 著延长荷瘤小鼠的生存期[23]。还有研究显示,蛋 白酶抑制剂也可通过PKCε依赖的AKT和XIAP表达 下调致敏胶质瘤细胞和胶质瘤干细胞对TRAIL诱 导的凋亡反应[24]。这些研究表明,将蛋白酶抑制 剂与TRAIL相结合可能是治疗脑胶质瘤和根除胶 质瘤干细胞的有效策略。 5.2 化疗药物联合TRAIL治疗

新近研究显示,胶质瘤干细胞中死亡受体DR4 和DR5呈低表达而细胞Fas相关死亡域样白细胞介 素-1β转换酶抑制蛋白呈过表达,因而对TRAIL诱 导的细胞凋亡出现抵抗。然而,顺铂能分别上调 和下调上述蛋白恢复胶质瘤干细胞的TRAIL细胞 凋亡通路,提示两者联合应用可作为治疗胶质母 细胞瘤的有效策略[25]。此外,紫杉醇与 TRAIL对 U87胶质瘤细胞及其来源的干细胞样细胞也具有协 同杀伤作用,其机制可能与DR4、裂解的Caspase 8和裂解的Caspase 3的上调有关[26]。Hingtgen等[27] 研究显示,化疗药物替莫唑胺能使胶质瘤细胞聚 集于G2~M期,激活细胞周期检控蛋白Chk1并使死 亡受体表达上调,与表达分泌型TRAIL的神经干 细胞联合使用甚至能诱导对TRAIL抵抗的胶质瘤 细胞的杀伤和凋亡蛋白表达的明显上调,可作为 增强胶质母细胞瘤治疗效果的新策略。 5.3 甘珀酸钠联合TRAIL治疗

新近研究显示,甘珀酸钠(生胃酮)能通过 上调死亡受体5、阻断缝隙连接的细胞间交流和 下调连接蛋白43的表达增强TRAIL对胶质瘤细胞 (包括对TRAIL不太敏感的原发性人脑胶质瘤细 胞株)的诱导凋亡作用,两者联合应用可使小鼠 的生存期延长27%[28]。由于甘珀酸钠的细胞毒性很 小,故此联合治疗方案有一定的临床实用性。 5.4 miRNA联合TRAIL治疗

基于miRNA在肿瘤细胞的增殖和凋亡中发挥 重要作用而胶质瘤高表达miR-21,有研究者开始 尝试以miR-21的反义寡核苷酸抑制miR-21的表达 以提高胶质瘤细胞对TRAIL治疗的敏感度。结果 显示,该方案与表达分泌型TRAIL的神经前体细 胞联合应用对Caspase的活性增加有协同作用,甚 至可彻底消灭小鼠脑内的胶质瘤[29]5.5 其他分子联合TRAIL治疗

新近研究发现,PI3-激酶/mTOR抑制剂能抑制 胶质瘤细胞增殖和侵袭,使细胞周期停滞在G0~G1 期,并可增强表达分泌型TRAIL 的神经干细胞对 小鼠胶质瘤的治疗效果[30]。还有研究显示,携带 EGFR特异性纳米体能抑制肿瘤细胞的EGFR信号 通路并提高胶质瘤细胞对TRAIL诱导细胞凋亡的 敏感度,从而同时发挥抑制肿瘤细胞增殖和促进 细胞凋亡的双重作用[31]。也有报告指出,脂氧合 酶抑制剂MK886能通过上调死亡受体DR5和下调 抗凋亡蛋白Survivin有效地提高对TRAIL敏感及耐 药的胶质瘤细胞凋亡,发挥较单用表达TRAIL的 骨髓MCSs更强大的抗胶质瘤功效。 6 结语

综上所述,TRAIL在脑胶质瘤的基因治疗中 显示出令人鼓舞的应用前景。虽然重组TRAIL和 以病毒为载体的TRAIL治疗尚面临一些困难, 部分胶质瘤细胞(特别是胶质瘤干细胞)也对 TRAIL的治疗存在抵抗,但以纳米粒子和各种干 细胞为载体的TRAIL治疗显示出更好的胶质瘤特 异性靶向性,蛋白酶抑制剂、化疗药物、miRNA 等与TRAIL联合应用也对克服耐TRAIL诱导的细 胞凋亡发挥了重要作用。由此可见,随着具有特 异性靶向迁移能力载体的应用和胶质瘤干细胞耐 TRAIL之问题的解决,TRAIL有望在脑胶质瘤的 治疗中有更广泛的应用前景。

参考文献
[1] Capper D, Gaiser T, Hartmann C, et al. Stem-cell-like glioma cells are resistant to TRAIL/Apo2L and exhibit down-regulation of caspase-8 by promoter methylation[J]. Acta Neuropathol,2009,11 7(4):445-56.
[2] Frank S, K?hler U, Schackert G, et al. Expression of TRAIL and its receptors in human brain tumors[J]. Biochem Biophys Res Commun,1999,257(2):454-9.
[3] Thorburn A. Tumor necrosis factor-related apoptosisinducing ligand (TRAIL) pathway signaling[J]. J Thorac Oncol,2007,2(6):461-5.
[4] Abdulghani J, El-Deiry WS. TRAIL receptor signaling and therapeutics[J]. Expert Opin Ther Targets,2010,14(10):1091-108.
[5] Pollack IF, Erff M, Ashkenazi A. Direct stimulation of apoptotic signaling by soluble Apo2l/tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand leads to selective killing of glioma cells[J]. Clin Cancer Res,2001,7(5):1362-9.
[6] Perlstein B, Finniss SA, Miller C, et al. TRAIL conjugated to nanoparticles exhibits increased anti-tumor activities in glioma cells and glioma stem cells in vitro and in vivo[J]. Neuro Oncol,2013,15(1):29-40.
[7] Ehtesham M, Kabos P, Gutierrez MA, et al. Induction of glioblastoma apoptosis using neural stem cell-mediated delivery of tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand[J]. Cancer Res,2002, 62(24):7170-4.
[8] Shah K, Bureau E, Kim DE, et al. Glioma therapy and realtime imaging of neural precursor cell migration and tumor regression[J]. Ann Neurol,2005,57(1):34-41.
[9] Germano IM, Uzzaman M, Benveniste RJ, et al. Apoptosis in human glioblastoma cells produced using embryonic stem cellderived astrocytes expressing tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand[J]. J Neurosurg,2006,105(1):88-95.
[10] Uzzaman M, Keller G, Germano IM. In vivo gene delivery by embryonic-stem-cell-derived astrocytes for malignant gliomas[J]. Neuro Oncol,2009,11(2):102-8.
[11] Fan CG, Zhang QJ. Application prospect of bone marrow mesenchymal stem cells in the treatment of glioma[J]. Zhongguo Zu Zhi Gong Cheng Yan Jiu,2012,16(41):7737-41. [范存刚, 张庆 俊. 骨髓间充质干细胞在脑胶质瘤治疗中的应用前景[J].中国 组织工程研究,2012,16(41),7737-41.]
[12] Sasportas LS, Kasmieh R, Wakimoto H, et al. Assessment of therapeutic effi cacy and fate of engineered human mesenchymal stem cells for cancer therapy[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,2009,106(12):4822-7.
[13] Menon LG, Kelly K, Yang HW, et al. Human bone marrowderived mesenchymal stromal cells expressing S-TRAIL as a cellular delivery vehicle for human glioma therapy[J]. Stem Cells,2009,27(9):2320-30.
[14] Yang B, Wu X, Mao Y, et al. Dual-targeted antitumor effects against brainstem glioma by intravenous delivery of tumor necrosis factor-related, apoptosis-inducing, ligand-engineered human mesenchymal stem cells[J]. Neurosurgery,2009,65(3):610- 24.
[15] Fan CG, Zhou JR, Zhang QJ. The application prospects of human umbilical cord blood derived mesenchymal stem cells in brain glioma[J]. Guo Ji Shen Jing Bing Xue Shen Jing Wai Ke Xue Za Zhi, 2011,38(6):598-602. [范存刚, 周景儒, 张庆俊. 人脐带血来 源的间充质干细胞在脑胶质瘤治疗中的应用前景[J]. 国际神经 病学神经外科学杂志,2011,38(6), 598-602.]
[16] Kim SM, Lim JY, Park SI, et al. Gene therapy using TRAIL-secreting human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells against intracranial glioma [J]. Cancer Res,2008,68(23):9614-23.
[17] Kim SM, Oh JH, Park SA, et al. Irradiation enhances the tumor tropism and therapeutic potential of tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand-secreting human umbilical cord bloodderived mesenchymal stem cells in glioma therapy[J]. Stem Cells,2010,28(12):2217-28.
[18] Fan CG, Zhang QJ. The potentials of human adipose tissue derived mesenchymal stem cells in targeted therapy of experimental glioma[J]. Zhongguo Xian Dai Shen Jing Ji Bing Za Zhi,2012,12(6):651-4. [范存刚, 张庆俊. 人脂肪源性间充质干细 胞在实验性脑胶质瘤靶向治疗中的应用[J]. 中国现代神经疾病 杂志,2012,12(6),651-4.]
[19] Choi SA, Hwang SK, Wang KC, et al. Therapeutic efficacy and safety of TRAIL-producing human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells against experimental brainstem glioma[J]. Neuro Oncol,2011,13(1):61-9.
[20] Fan CG, Wang DL, Zhang QJ,et al. The experimental investigation of glioma-trophic capacity of human umbilical cord-derived mesenchymal stem cells after intraventricular administration[J]. Zhongguo Xian Dai Shen Jing Ji Bing Za Zhi, 2013,13(7),620-7.[范存刚,王栋梁,张庆俊,等. 经侧脑室注射人脐带间充质干 细胞向胶质瘤趋化能力的实验研究[J]. 中国现代神经疾病杂 志,2013,13(7),620-7.]
[21] Fan CG, Zhang QJ, Zhou JR. Therapeutic potentials of mesenchymal stem cells derived from human umbilical cord[J]. Stem Cell Rev,2011,7(1):195-207.
[22] Unterkircher T, Cristofanon S, Vellanki SH, et al. Bortezomib primes glioblastoma, including glioblastoma stem cells, for TRAIL by increasing tBid stability and mitochondrial apoptosis[J]. Clin Cancer Res,2011,17(12):4019-30.
[23] Balyasnikova IV, Ferguson SD, Han Y, et al. Therapeutic effect of neural stem cells expressing TRAIL and bortezomib in mice with glioma xenografts[J]. Cancer Lett,2011,310(2):148-59.
[24] Kahana S, Finniss S, Cazacu S, et al. Proteasome inhibitors sensitize glioma cells and glioma stem cells to TRAIL-induced apoptosis by PKCε-dependent downregulation of AKT and XIAP expressions[J]. Cell Signal,2011,23(8):1348-57.
[25] Ding L, Yuan C, Wei F, et al. Cisplatin restores TRAIL apoptotic pathway in glioblastoma-derived stem cells through up-regulation of DR5 and down-regulation of c-FLIP[J]. Cancer Invest,2011,29( 8):511-20.
[26] Qiu B, Sun X, Zhang D, et al. TRAIL and paclitaxel synergize to kill U87 cells and U87-derived stem-like cells in vitro[J]. Int J Mol Sci,2012,13(7):9142-56.
[27] Hingtgen S, Ren X, Terwilliger E, et al. Targeting multiple pathways in gliomas with stem cell and viral delivered S-TRAIL and Temozolomide[J]. Mol Cancer Ther,2008,7(11):3575-85.
[28] Yulyana Y, Endaya BB, Ng WH, et al. Carbenoxolone enhances TRAIL-induced apoptosis through the upregulation of death receptor 5 and inhibition of gap junction intercellular communication in human glioma[J]. Stem Cells Dev,2013,22(13): 1870-82.
[29] Corsten MF, Miranda R, Kasmieh R, et al. MicroRNA-21 knockdown disrupts glioma growth in vivo and displays synergistic cytotoxicity with neural precursor cell delivered S-TRAIL in human gliomas[J]. Cancer Res,2007,67(19):8994-9000.
[30] Bagci-Onder T, Wakimoto H, Anderegg M, et al. A dual PI3K/mTOR inhibitor, PI-103, cooperates with stem celldelivered TRAIL in experimental glioma models[J]. Cancer Res,2011,71(1):154-63.
[31] van de Water JA, Bagci-Onder T, Agarwal AS, et al. Therapeutic stem cells expressing variants of EGFR-specific nanobodies have antitumor effects[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,2012,109(41):16642-7.