肿瘤防治研究  2014, Vol.41 Issue (01): 16-21.   PDF    
去甲斑蝥素通过JAK-STAT3途径诱导结肠癌LS-174T细胞凋亡
张国建1,李 猛1 *,王天阳2,石 铖3,王晨宇4,闫庆辉1    
1.050000 石家庄,河北医科大学第二附属 医院肛肠外科,
2.肝胆外科;
3.河北省中医院脾胃病科;
4.河北医科大学第二附属医院微创外科
摘要目的 探讨去甲斑蝥素(NCTD)诱导结肠癌LS-174T细胞的凋亡效应及其可能分子机制。方 法 应用MTT法检测NCTD对细胞生长的抑制作用,通过AO/EB染色、透射电子显微镜观察细胞形态 及超微结构的变化,AnnexinV/PI染色检测细胞凋亡率,Western blot检测stat3、survivin、Mcl-1、bax 蛋白的表达情况。结果 去甲斑蝥素对结肠癌LS-174T细胞具有显著的生长抑制作用,并呈时间— 剂量依赖性;40 μg/ml作用72 h时达到最大抑制率(72.4±3.1)%;AO/EB染色及流式细胞术显示,随着 NCTD浓度的增加,细胞凋亡率明显增加;透射电子显微镜观察发现,结肠癌LS-174T细胞出现明显 凋亡超微结构变化;Western blot结果显示,stat3、survivin、Mcl-1表达明显下降,bax表达明显上升。 结论 去甲斑蝥素可以抑制结肠癌LS-174T细胞的生长并促进其凋亡,机制可能是通过抑制stat3途径实 现的。
关键词: 去甲斑蝥素     AO/EB     AnnexinV/PI     Survivin     stat3    
Norcantharidin Induced Apoptosis of Human Colon Carcinoma Cells LS-174T through Inhibiting JAK-STAT3 Signal Pathway
ZHANG Guojian1,LI Meng1 *,WANG Tianyang2,SHI Cheng3,WANG Chenyu4,YAN Qinghui1    
1.Department of Anorectal Surgery,The Second Hospital of Hebei Medical University,Shijiazhuang 050000,China,
2.Department of Hepatobiliary Surgery,
3.Department of Spleen and Stomach Diseases,Chinese Medicine Hospital of Hebei Province;
4.Department of Minimally Invasive Surgery,The Second Hospital of Hebei Medical University
AbstractObjective To investigate the effect of norcantharidin(NCTD) on the apoptosis of human colon carcinoma cells LS-174T and its possible molecular mechanism.Methods MTT assay was used to detect the effects of NCTD on growth inhibition in LS-174T cells. Acridine orang/ ethidium (AO/EB) bromide double staining and transmission electron microscope technique were used to observe the changes of cellular morphology and ultrastructure. AnnexinV/PI staining was used to detect the rate of apoptosis. Western blot was used to assess the protein levels of stat3, survivin, Mcl-1 and bax.Results NCTD signifi cantly inhibited LS-174T cells growth in a time- and dose-dependent manner(5, 10, 20, 40 μg/ml). The maximum inhibition rate was (72.4±3.1)% at 40 μg/ml and 72 h. AO/EB staining and fl ow cytometry showed that with the increase of the concentration of NCTD, apoptosis rate was increased signifi cantly.Transmission electron microscope found signifi cant morphological change of apoptosis; Western blot results showed that the protein expression of stat-3, survivin and Mcl-1 was significantly reduced, whereas the expression of bax was significantly increased.Conclusion NCTD can inhibit the growth of colon cancer cells LS-174T and promote its apoptosis. The mechanism maybe through inhibiting stat3.
Key words: Norcantharidin     AO/EB     AnnexinV/PI     Survivin     stat3    
0.引言

去甲斑蝥素(norcantharidin,NCTD)是从我国传 统抗肿瘤中药斑蝥中提取的斑蝥素的衍生物,由 于其特殊的升白细胞作用,近年来被广泛应用于 临床对各种肿瘤的治疗和术后的化疗中,同时大 量的体外实验也证实了去甲斑蝥素有抑制肝癌、 乳腺癌、胆管癌[1, 2, 3]等肿瘤细胞生长,促进肿瘤细胞凋亡的作用。但当前对结肠癌细胞的体外研 究报道较少,且其潜在的抑癌机制也有待研究。 STAT3通路的持续活化可导致细胞的异常增生, 抑制细胞凋亡,促使细胞向恶性转化,因此被公 认为是一种癌基因[4, 5, 6],同时大量研究表明在结肠 癌中存在JAK3和STAT3持续高表达,STAT3的持 续活化不仅促进结肠肿瘤的生长,并且促进肿瘤细 胞的扩散[7, 8, 9]。近年来对NCTD抗肿瘤作用的研究 证实:NCTD可以通过调控细胞周期、诱导细胞 凋亡、抗肿瘤血管及淋巴管形成从而阻止肿瘤的 转移来实现其抗肿瘤作用[10]。其中大量研究证实 了去甲斑蝥素可以通过线粒体通路激活caspase系 统引起肿瘤细胞的凋亡[11, 12],同时也有研究证实 NCTD可以通过分别激活JNK激酶依赖性通路、 TRAIL/DR5信号转导通路以及TR3依赖性通路来 抑制肿瘤细胞生长、促进肿瘤细胞凋亡 [13, 14, 15] ,但对 于JAK-STAT通路研究报道较少。 本研究旨在探讨去甲斑蝥素对体外结肠癌LS- 174T细胞的生长抑制作用,同时研究去甲斑蝥素 作用下STAT3及其下游相关抗凋亡蛋白的表达,从 而探讨去甲斑蝥素可能的促凋亡机制,为临床的应 用提供实验依据。 1 材料与方法 1.1 药品与试剂

去甲斑蝥素和DMSO购自美国Sigma公司; RPMI1640购自美国Gibco公司, 四甲基偶氮唑盐 (MTT)购自Biosharp公司,吖啶荧光染料购自罗 莱宝科技有限公司,胎牛血清购自杭州四季青公 司,兔抗人bax、stat3、Mcl-1、survivin多克隆抗 体购自美国Bioworld公司,兔抗人β-actin单克隆抗 体购自美国Abcam公司,Annexinv凋亡检测试剂盒 购自北京宝赛生物试剂有限公司。 1.2 细胞系及细胞培养

人结肠癌LS-174T细胞购自中国生命科学院上 海生命研究所,以含10%胎牛血清、100 u/ml青霉 素和100 μg/ml链霉素的RPMI1640培养液于温度 37℃、5%CO2温箱中培养,待细胞贴壁,取对数 生长期细胞进行实验。 1.3 MTT法检测去甲斑蝥素对LS-174T细胞的生长 抑制作用

取生长对数期的LS-174T细胞,将其消化成 单细胞悬液,调整细胞终浓度为1×105/ml,以每 孔200 μl接种于96孔培养板中,培养24 h,待细胞 贴壁后,弃上清液,分别加入质量浓度为5、10、 20和40 μg/ml的去甲斑蝥素培养,同时设空白组 (DMSO溶剂对照组)和阴性对照组(不加药物 组),每个浓度设6个复孔。加药作用24、48、72 h,每孔加入20 μl MTT(5 mg/ml),于培养箱中继 续培养4 h,弃上清液,每孔加入200 μlDMSO,充 分振荡,使蓝紫色颗粒完全溶解。Ascent酶标仪检 测OD490值,计算细胞生长抑制率IR=(1-实验组 OD值/对照组OD值)×100%,绘制细胞生长曲线。 1.4 荧光显微镜下细胞形态学观察

将对数生长期的LS-174T细胞消化,收集并 调整细胞至1×105个/毫升,接种于6孔板中进行爬 片,培养24 h待细胞贴壁生长后,弃去培养液,分 别加入质量浓度为10、40 μg/ml的去甲斑蝥素,同 时设阴性对照组,培养箱中继续培养24 h后,弃上 清液,PBS洗涤,4%多聚甲醛固定10 min,滴加 AO/EB等体积混合染料,迅速置于荧光显微镜下 观察并拍照。 1.5 透射电子显微镜观察细胞超微结构的变化

收集0、10、40 μg/ml去甲斑蝥素作用24 h 后的结肠癌LS-174T细胞以2 000 r/min,离心10 min,小心吸尽上清液,沿管壁加入2.5%的戊二 醛,4℃保存,之后加入1%的锇酸4℃固定2 h,用 梯度丙酮脱水,用Epon 618纯化树脂浸透,包埋, 烤箱中聚合后,用莱卡(Leica)超薄切片机制成 切片,经醋酸铀和柠檬酸铅双重染色后,用透射 电子显微镜观察及拍照。 1.6 流式细胞术AnnexinV-FITC/PI染色法

收集阴性对照组细胞和药物组(5、10、20、 40 μg/ml)作用24 h后细胞,于室温2 000 r/min, 离心10 min,收集细胞,用预冷PBS重悬细胞, 2 000 r/min离心10 min,洗涤细胞,加入300 μl Binging Buffer 悬浮,加入5 μl AnnexinV-FITC混匀 后,避光,室温孵育15 min,上机前5 min加入5 μl PI,补加200 μl的1×Binding Buffer,上流式细胞仪检 测。 1.7 Western blot法检测 stat3、survivin、Mcl-1、 bax的蛋白表达

收集对照组和药物组(5、10、20、40 μg/ml) 作用24 h后细胞,PBS洗涤两遍,分别加入300 μl 蛋白裂解液,冰上作用1 h,12 000 r/min,离心10 min,取上清液,样品置于-80℃保存,Bradford 法测定蛋白质浓度,每个样品孔加入50 μg蛋白, 进行12%SDS-PAGE分离蛋白,将蛋白转移到 PVDF膜上,1%BSA 37℃封闭1 h,加入1:500稀释 的survivin、stat3、Mcl-1和bax多克隆抗体,室温振荡5 h,洗膜后,荧光二抗(抗兔lgG)避光孵育 1 h,洗膜,发光。 1.8 统计学方法

应用SPSS13.0软件进行统计学分析,检验数 据用单因素方差分析和t检验,数据用均数±标准 差(x±s)表示。 2 结果 2.1 去甲斑蝥素对结肠癌LS-174T细胞的抑制作用

MTT结果表明:药物作用组NCTD(5、10、 20、40 μg/ml)作用24 h后,抑制率分别为(9.04 ±2.4)% 、(18.5 ±3.5) %、(40.1 ±5.8)% 、(58.2 ± 2.7)%;作用72 h后,抑制率分别为(18.14 ±7.4)%、 (36.7 ±4.3)% 、(49.9 ±3.6) %、(72.4±3.1)%(n=3, x±s)。最大抑制率在40 μg/ml作用72 h出现 ,见 图1。去甲斑蝥素对结肠癌LS-174T细胞有明显的 生长抑制作用,并且呈时间-剂量依赖性。 2.2 AO/EB 观察细胞形态学变化 正常组细胞呈均一绿染;10 μg/ml药物组细 胞体积减小,胞质减少,细胞核固缩,染色质浓 集,凋亡细胞增加;40 μg/ml药物组可见细胞核碎 裂以及凋亡小体,出现了典型的“鬼影”细胞,见图2。随着药物浓度的增加凋亡率明显增加。

图1 去甲斑蝥素对结肠癌LS-174T细胞生长的抑制作用 Figure1 Inhibitory effect of NCTD on cell proliferation of the human colon carcinoma cells LS-174T

图2 AO/EB染色观察结肠癌LS-174T细胞形态学的变化 Figure2 Morphology of human colon carcinoma cells LS-174T was detected by acridine orange/ethidium bromide staining
2.3 透射电子显微镜观察细胞超微结构的变化

阴性对照组细胞的细胞核大、双核且各有一 个大而明显的核仁,细胞表面有些细长突起,10 μg/ml去甲斑蝥素作用24 h后,细胞微绒毛减少, 核体积缩小,核固缩,电子密度增加。40 μg/ml去 甲斑蝥素作用24 h后,核膜破裂,核染色质外排到 细胞质中,见图3

图3 透射电子显微镜下观察去甲斑蝥素对结肠癌LS-174T细胞凋亡的影响 Figure3 Effects of NCTD on apoptosis of human colon carcinoma cells LS-174T observed under transmission electron
2.4 流式AnnexinV-FITC/PI染色法分析细胞凋亡 率

流式细胞仪AnnexinV-FITC/PI染色法检测药物组和阴性对照组凋亡率,结果显示与阴性对照组 相比不同药物浓度(5、10、20、40 μg/ml)NCTD 作用24 h后,细胞凋亡率明显增加,且呈剂量依 赖性,各药物组之间凋亡率差异有统计学意义 (P<0.05),见图4表1

图4 AnnexinV/PI法检测NCTD诱导LS-174T细胞的凋亡 Figure4 Effects of NCTD on apoptosis of the human colon carcinoma cells LS-174T detected by AnnexinV/PI staining methods

表1 AnnexinV/PI法检测NCTD诱导LS-174T细胞凋亡百分率 (x±s,n=3) Table1 Apoptosis rate of the human colon carcinoma LS-174T cells induced by NCTD was detected by AnnexinV /PI staining methods
2.5 Western blot方法检测stat3、survivin、Mcl-1和 bax蛋白的表达

阴性对照组和药物组干预组(NCTD 5、10、 20、40 μg/ml)作用24 h后,检测stat3、survivin、 Mcl-1、bax蛋白表达情况。结果显示:stat3、 survivin、Mcl-1蛋白表达减少,bax蛋白表达增加,且 随药物浓度的增加表达也增加,呈明显的剂量依 赖关系,见图5

图5 Western blot测定去甲斑蝥素对survivin、stat3、 Mcl-1、bax表达的影响 Figure5 Effects of NCTD on the expression of survivin , stat3,Mcl-1 and bax detected by Western blot
3 讨论

随着人民生活水平的提高和饮食结构的改 变,结肠癌在我国的发病率呈现出逐年上升趋 势,当前对于结肠癌的治疗主要以手术为主辅以 放化疗,但由于结肠癌的发病比较隐匿,出现症 状时往往已处于中晚期,错过了手术的最佳时 期,而单纯放化疗远期生存率并不理想,并且复 发率及转移率较高,尤其是晚期结肠癌生存率极 低,于是从传统中医药理论出发,用中药及其提 取成分治疗肿瘤为人们提供了新的治疗思路,并 且越来越多地受到国内外医学专家的重视。本实 验通过去甲斑蝥素(NCTD)对体外结肠癌LS-174T 细胞的作用,证实了去甲斑蝥素对结肠癌细胞存 在明显的生长抑制作用,并且呈时间-剂量相关 性。进一步应用AO/EB 染色以及AnnexinV/PI法检 测LS-174T细胞凋亡百分率,结果显示,去甲斑蝥 素作用下早期凋亡,晚期凋亡细胞数量随着药物 浓度的增加明显增加,提示去甲斑蝥素通过增加 凋亡来抑制结肠癌LS-174T细胞生长。同时应用透 射电子显微镜观察细胞超微结构发现,出现了细 胞表面微绒毛减少,胞核固缩、细胞核膜破裂,染色质外排等典型的凋亡形态学改变,更加证实 了去甲斑蝥素对结肠癌细胞的促凋亡作用。 JAK-STAT3 信号转导通路,参与肿瘤的发 生、发展,在许多人类肿瘤中被激活,成为目前 肿瘤信号转导通路研究的热点。 JAK-STAT 信号 通路由JAK酪氨酸激酶家族和STAT信号转导和转 录激活因子家族构成,STAT信号转导通路是表皮 生长因子(EGF)、JAK和IL-6等多个致癌性酪氨酸 激酶信号通道汇聚的焦点[16],STAT3作为重要的信 号转导分子,通过激活靶基因而诱导某些关键产 物的表达来影响肿瘤的发生;重要的靶基因产物 包括影响细胞凋亡的Bcl-2家族成员。本实验应用 Western blot对NCTD作用结肠癌LS-174T细胞后相 关蛋白的表达进行检测,发现NCTD可以明显抑制 STAT3蛋白的表达,且呈剂量相关性,推测NCTD 促进细胞凋亡的机制可能与抑制JAK-STAT3的信 号通路活化有关。

Bcl-2家族包括抑制凋亡和促进凋亡两大类,前 者包括Bcl-2、Bcl-xL、Mcl-1等,后者包括Bax、 Bak、Bcl-xS等[17],髓样细胞白血病-1(Myeloid Cell Leuke-lia-1,MCL-1)基因属于BCL-2抗凋亡家族成 员之一,Mcl-1基因编码的蛋白主要位于细胞内膜 系统,尤其是线粒体膜,通过阻止Smac、细胞色素 C、AIF的释放来抑制细胞的凋亡,该基因的表达 异常与肿瘤的发生发展关系密切,而目前研究表 明JAK-STAT3 信号转导途径是调节Mcl-1表达的主 要途径[18, 19]。既然NCTD可以抑制JAK-STAT3的信 号通路的活化,那么,Mcl-1的表达是否也发生相 应改变呢?Western blot结果显示,NCTD呈剂量 依赖性地抑制Mcl-1的表达,初步证明NCTD促进 细胞凋亡的机制可能与抑制JAK-STAT3的信号通 路、减少Mcl-1表达有关。

Bax为Bcl-2促凋亡家族成员之一,位于细胞 质,当细胞DNA受损时,可与Bcl-2形成同源或者 异源二聚体,拮抗bcl-2蛋白的抗凋亡功能,通过 激活线粒体凋亡通路,引起一系列caspase家族的 级联反应,最终导致细胞凋亡的发生[20, 21]。与我 们预想一致的是NCTD呈剂量依赖性促进Bax的表 达,上述结果进一步说明NCTD诱导细胞凋亡的机 制与激活促凋亡基因和抑制抗凋亡基因的表达有 关。

Survivin为迄今为止发现的最强的凋亡抑制 因子(inhibitor of apoptosis,IAP),在正常分化 成熟的组织中几乎不表达, 而选择性地表达于多 种恶性肿瘤组织。 它除了具有促进细胞的抗凋亡和向恶性转化作用外,还有促细胞增殖、血管生 成和肿瘤转移的作用[22],虽然不属于bcl-2家族, 但研究表明survivin上具有STAT3结合位点,通过 抑制STAT3的表达可以减少survivin蛋白的表达, 从而促进肿瘤细胞的凋亡[23, 24, 25]。本实验也发现, NCTD可以通过抑制STAT3信号通路减少survivin的 表达,与以往的报道相一致。

综上所述,本实验应用Western blot对NCTD 作用结肠癌LS-174T细胞后相关蛋白的表达进行检 测,发现NCTD可以明显抑制STAT3蛋白的表达, 且呈剂量相关性,进一步检测其下游调控蛋白 survivin、Mcl-1的表达,发现显示随着药物浓度的 增加它们的表达也随之减少,而促凋亡蛋白Bax表 达反而增加,这些结果表明去甲斑蝥素可能直接 或者间接参与了对JAK-STAT3凋亡通路的调节, 通过减少STAT3的磷酸化激活,并抑制其与下游抗 凋亡基因启动子结合,使相关凋亡蛋白的表达减 少,同时激活线粒体等凋亡通路,从而诱发结肠 癌细胞的凋亡。

参考文献
[1] Fan YZ, Fu JY, Zhao ZM, et al. Inhibitory effect of norcantharidin n the growth of human gallbladder carcinoma GBC-SD cells in itro[J]. Hepatobiliary Pancreat Dis Int ,2007,6(1):72-80.
[2] Fan YZ, Fu JY, Zhao ZM, et al .The in vitro effect of norcantharidin n proliferation and invasion of human gallbladder carcinoma BC-SD cells and its mechanism[J].Zhonghua Zhong Liu Za Zhi, 004,26(5):271-4.[范跃祖,傅锦业,赵泽明,等. 去甲斑蝥素 人胆囊癌GBC-SD细胞系增殖及侵袭的影响[J]. 中华肿瘤杂志, 2004,26(5):271-4.]
[3] Chang C, Zhu Y, Tang X, et al. The anti-proliferative effects of orcantharidin on human HepG2 cells in cell culture[J].Mol Biol ep,2011,38(1):163-9.
[4] Chen CL, Cen L, Kohout J, et al.Signal transducer and activator f transcription 3 activation is associated with bladder cancer cell rowth and survival[J].Mol Cancer,2008,7:78.
[5] Fossey SL, Liao AT, McCleese JK, et al. Characterization of STAT3 ctivation and expression in canine and human osteosarcoma[J]. MC Cancer,2009,9:81.
[6] de Araújo VC, Furuse C, Cury PR, et al. STAT3 expression in alivary gland tumours[J]. Oral Oncol,2008,44(5):439-45.
[7] Lin Q, Lai R, Chirieac LR,et al.Constitutive activation of JAK3/ TAT3 in colon carcinoma tumors and cell lines: inhibition of AK3/STAT3 signaling induces apoptosis and cell cycle arrest of olon carcinoma cells.[J]. Am J Pathol,2005,167(4):969-80.
[8] Corvinus FM, Orth C, Moriggl R, et al. Persistent STAT3 activation n colon cancer is associated with enhanced cell proliferation and umor growth[J]. Neoplasia,2005,7(6):545-55.
[9] Xiong H, Zhang ZG, Tian XQ, et al. Inhibition of JAK1, 2/STAT3 ignaling induces apoptosis, cell cycle arrest, and reduces tumor ell invasion in colorectal cancer cells[J]. Neoplasia,2008,10(3): 87-97.
[10] Yeh CB, Hsieh MJ, Hsieh YH, et al. Antimetastatic effects of orcantharidin on hepatocellular carcinoma by transcriptional nhibition of MMP-9 through modulation of NF-κB activity[J]. LoS One,2012,7(2):e31055.
[11] An WW,Gong XF,Wang MW,et al.Norcantharidin induces poptosis in HeLa cells through caspase,MAPK,and mitochondrial athways[J].Acta Pharmacol Sin,2004,25(11):1502-8.
[12] Chang C, Zhu YQ, Mei JJ, et al. Involvement of mitochondrial athway in NCTD-induced cytotoxicity in human hepG2 cells[J]. Exp Clin Cancer Res,2010,29:145.
[13] Yan-Nian Chen,Chi-Chih Cheng,Jung-Chou Chen, et al. orcantharidin-induced apoptosis is via the extracellular ignal-regulated kinase and c-Jun-NH2-terminal kinase ignaling pathways in human hepatoma HepG2 cells[J]. Br J harmacol,2003,140(3): 461-70.
[14] Liu S, Yu H, Kumar SM, et al. Norcantharidin induces melanoma ell apoptosis through activation of TR3 dependent pathway[J]. ancer Biol Ther,2011,12(11):1005-14.
[15] Yeh CH, Yang YY, Huang YF, et al. Induction of apoptosis in uman Hep3B hepatoma cells by norcantharidin through a p53 ndependent pathway via TRAIL/DR5 signal transduction[J]. hin J Integr Med, 2012,18(9):676-82.
[16] Jing N, Tweardy DJ,et al. Targeting Stat3 in cancer therapy[J]. nticancer Drugs, 2005,16 (6):601-7.
[17] Cory S,Huang DC, Adams JM, et al. The Bcl-2 family: roles n cell survival and oncogenesis[J].Oncogene,2003,22(53): 590-607.
[18] Epling-Burnette PK,Liu JH,Catlett-Falcone R,et al.Inhibition of TAT3 signaling leads to apoptosis of leukemic large granular ymphocytes and decreased Mcl-1 expression[J]. J Clin Invest, 001,107( 3):351-62.
[19] Zhang B,Potyagaylo V,Fenton RG,et al.IL-6-independent xpression of Mcl-1 in human multiple myeloma[J]. ncogene,2003,22(12): 1848-59.
[20] Chipuk JE, Maurer U, Green DR,et al.Pharmacologic activation f p53 elicits Bax-dependent apoptosis in the absence of ranscription[J]. Cancer Cell,2003,4(5):371-81.
[21] Peng LT,Xu X.Effect of Fas,bcl-2 and caspase8 on Norcantharidin nduced Esophageal Cancer Cell Line Eca-109 Apoptosis and olecular Mechanism[J].Zhong Liu Fang Zhi Yan Jiu,2010,37(4): 98-401.[彭林涛,许欣.Fas、bcl-2和caspase8在去甲斑蝥 诱导食管癌细胞凋亡中的作用及机制[ J ] . 肿瘤防治研究,2010,37(4):398-401.]
[22] Wu XY, Fu ZX, Wang XH, et al.Effect of hypoxia-inducible actor 1-α on Survivin in colorectal cancer[J]. Mol Med Rep, 010,3(3):409-15.
[23] Scheper MA, Nikitakis NG, Sauk JJ, et al.Survivin is a ownstream target and effector of sulindac-sensitive oncogenic tat3 signalling in head and neck cancer[J]. Int J Oral Maxillofac urg, 2007,36(7):632-9.
[24] Kanda N, Seno H, Konda Y, et al. STAT3 is constitutively activated nd supports cell survival in association with survivin expression n gastric cancer cells[J]. Oncogene, 2004,23(28):4921-9.
[25] Aoki Y, Feldman GM, Tosato G, et al.Inhibition of STAT3 ignaling induces apoptosis and decreases survivin expression in rimary effusion lymphoma[J]. Blood, 2003,101(4):1535-42.