miR-1-3p Inhibits Malignant Biological Behavior of Human Esophageal Squamous Cell Carcinoma Cells by Regulating STC2
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摘要:目的
探讨miR-1-3p对人食管鳞状细胞癌（ESCC）细胞的恶性生物学行为的影响及其可能的作用机制。
方法利用基因表达数据库（GEO）筛选ESCC中差异表达的miRNA。采用qRT-PCR检测人ESCC细胞KYSE30、KYSE150、KYSE410、KYSE510和Eca109及正常食管上皮细胞HET-1A中miR-1-3p的表达水平。CCK-8试剂盒、划痕愈合和Transwell实验以及流式细胞术分别检测转染miR-1-3p mimic对ESCC细胞增殖、迁移和侵袭、凋亡能力的影响。使用生物信息学工具预测miR-1-3p的靶基因，Kaplan-Meier法分析癌症基因组图谱（TCGA）数据库中STC2表达水平与患者预后的关系。采用FISH检测miR-1-3p的亚细胞定位，双荧光素酶报告基因验证miR-1-3p与STC2的靶向关系。RNA免疫沉淀（RIP）实验检测miR-1-3phe STC2的结合。Western blot法检测转染miR-1-3p mimic对ESCC细胞中STC2及内质网应激相关蛋白p-PERK、p-eIF2α、ATF4表达水平的影响。CCK-8、划痕愈合、Transwell实验和流式细胞术分别检测过表达和敲低STC2对ESCC细胞增殖、迁移、侵袭和凋亡能力的影响。
结果ESCC细胞中miR-1-3p的表达水平均低于HET-1A细胞（均P<0.05），转染miR-1-3p mimic可抑制ESCC细胞增殖、迁移和侵袭能力（均P<0.05），促进ESCC细胞凋亡（均P<0.001）。生物信息学工具预测miR-1-3p的靶基因为STC2，ESCC组织中STC2的表达水平高于正常食管上皮组织，与预后呈负相关（均P<0.05）。miR-1-3p位于胞质，并可直接与STC2 mRNA结合。转染miR-1-3p mimic可下调STC2、p-PERK、p-eIF2α、ATF4蛋白的表达水平（均P<0.05）。过表达STC2可促进ESCC细胞增殖、迁移和侵袭能力（均P<0.05），抑制ESCC细胞凋亡（均P<0.05）。敲低STC2可抑制ESCC细胞增殖、迁移和侵袭能力（均P<0.05），促进ESCC细胞凋亡（均P<0.05）。
结论miR-1-3p通过靶向调控STC2抑制ESCC细胞的恶性生物学行为，促进ESCC细胞凋亡，可能是通过抑制内质网应激发挥作用。
Abstract:ObjectiveTo explore the effect of miR-1-3p on the malignant biological behavior of human esophageal squamous cell carcinoma cells and the potential mechanisms. Methods The Gene Expression Omnibus (GEO) database was analyzed to screen differentially expressed miRNAs in esophageal squamous cell carcinoma (ESCC). qRT-PCR was used to detect the expression of miR-1-3p in human ESCC cell lines (KYSE30, KYSE150, KYSE410, KYSE510, and Eca109) and normal esophageal epithelial cell line HET-1A. CCK-8, wound healing, Transwell assays, and flow cytometry were applied to detect the effect of miR-1-3p on the proliferation, migration, invasion, and apoptosis of ESCC cells. Bioinformatics tool was used to predict the target genes of miR-1-3p. A Kaplan–Meier survival curve was drawn to analyze the correlation between STC2 expression and overall survival of patients in the ESCC cohort of the TCGA database. Fluorescence in situ hybridization was performed to verify the subcellular location of miR-1-3p in ESCC cells, and dual-luciferase reporter gene assay was performed to validate the regulation of miR-1-3p on stanniocalcin 2 (STC2). RNA immunoprecipitation assays were used to detect the binding of miR-1-3p and STC2. Western blot assay was performed to determine the effect of miR-1-3p on the expression of STC2 and endoplasmic reticulum stress pathway-related proteins, including p-PERK, p-eIF2α, and ATF4. CCK-8, wound healing, Transwell assays, and flow cytometry were applied to detect the effect of STC2 overexpression and knockdown on the proliferation, migration, invasion, and apoptosis of ESCC cells.
ResultsThe expression of miR-1-3p was lower in ESCC cell lines than in HET-1A cells (all P<0.05). The transfection of miR-1-3p mimic decreased the proliferation, invasion, and migration of ESCC cells (all P<0.05) and promoted the apoptosis of ESCC cells (all P<0.001). Bioinformatics tool showed that STC2 was a target gene of miR-1-3p. The expression of STC2 in ESCC tissues was higher than that in normal esophageal epithelial tissues in the ESCC cohort of TCGA database and was negatively correlated with prognosis (all P<0.05). miR-1-3p was located in the cytoplasm and can directly bind to STC2 mRNA. The transfection of miR-1-3p mimic downregulated the expression of STC2, p-PERK, p-eIF2α, and ATF4 (all P<0.05). The overexpression of STC2 promoted the proliferation, invasion, and migration (all P<0.05) and inhibited the apoptosis of ESCC cells (all P<0.05). Knockdown of STC2 inhibited the proliferation, invasion, and migration (all P<0.05) and promoted the apoptosis of ESCC cells (all P<0.05).
ConclusionmiR-1-3p inhibits the malignant biological behavior and promotes the apoptosis of esophageal squamous cell carcinoma cells by regulating STC2 possibly by suppressing the endoplasmic reticulum stress.
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0 引言
最新研究显示前列腺癌在美国是男性发病率最高的恶性肿瘤，死亡率排名第二[1]。在中国，前列腺癌发病率呈逐年增长趋势，增长率排名第一，且预后往往不好[2]。骨转移在晚期前列腺癌患者中非常常见，常引起高钙血症，病理性骨折，脊髓压迫等并发症，甚至可导致永久性瘫痪和肢体功能丧失，目前骨转移治疗主要是姑息治疗，仅能改善患者的生活质量[3-4]。因此我们需要深入研究前列腺癌骨转移发生的分子机制，开发有效的治疗方法来提高前列腺癌骨转移患者总体生存时间和生活质量。
前列腺癌细胞与骨微环境中的细胞相互作用促进了肿瘤细胞的生长和骨定植[5]。Stephan Paget 1889年提出了著名的“种子和土壤”学说：肿瘤转移依赖于肿瘤细胞（作为“种子”）和宿主微环境（作为“土壤”）之间相互作用的结果[6]。尽管这是经典的理论，但它仍不能全面的解释器官特异性转移的分子机制。肿瘤细胞在骨髓中定植需要经过多个步骤，包括血管的生成、局部转移和侵袭，脱离原发灶进入血管，然后从血管溢出，在骨髓中适应、存活和定植。肿瘤细胞可通过分泌一些因子或蛋白来调节骨髓微环境或转移前微环境的形成从而有利于肿瘤的转移，见图 1。本文主要对以上各个阶段主要参与的分子及其发生的机制进行综述。
1 降低细胞的黏附和发生上皮间质转化
肿瘤转移首先需要从原发病灶中脱落，包括细胞外基质降解，肿瘤细胞发生上皮间质转化，进入血液循环或淋巴循环，在这一过程中，其中有两类分子发挥重要作用。
1.1 整合素（Integrin）
整合素是细胞表面糖蛋白的一类大家族，它能与黏附分子形成异二聚体，并绑定很多细胞外基质成分，调节细胞骨架的结构来维持细胞的形状以利于细胞的迁移。不同的整合素在前列腺癌侵袭转移中的作用不同，有些已成为抗前列腺癌转移的靶标。如Integrin α2β1是胶原蛋白的受体，研究发现其与前列腺癌的侵袭性密切相关，靶向Integrin α2β1开发的抑制剂（如G. sinensis）在体外通过失活Integrin α2β1的表达抑制了由胶原介导的PC3细胞的迁移和黏附[7]。
1.2 影响上皮细胞-间充质转化（epithelia-mesenchymal transition, EMT）的相关分子
在原发肿瘤微环境中，肿瘤上皮细胞被成纤维细胞、巨噬细胞、周皮细胞和各种细胞外基质所包围。这些肿瘤微环境产生各种细胞因子：肿瘤坏死因子α（tumor necrosis factor, TNFα）、转化生长因子-β（transforming growth factor-β, TGF-β）、Wnt和低氧诱导因子-1（hypoxia inducible factor-1, HIF-1α）等促进EMT的发生。在EMT过程中，E-Cadherin表达降低，细胞紧密连接作用减弱，离开基底层有利于细胞的转移。同时重要的间质标志物如波形蛋白（Vimentin）、转录因子Snail、Slug、Twist 1、锌指增强绑定蛋白1（zinc-finger-enhancer binding protein 1, ZEB1）和锌指增强绑定蛋白2（zinc-finger-enhancer binding protein 2, ZEB2）在EMT过程中表达增加，导致细胞的运动能力增强[8]。
2 侵袭和转移
肿瘤细胞从原发部位脱落，侵入到细胞外基质（extracellular matrix, ECM），与基底膜（basement membrane, BM）及细胞间质中一些分子结合，并激活细胞合成、分泌各种降解酶类（如基质金属蛋白酶，丝氨酸蛋白酶等），协助肿瘤细胞穿过ECM进入血管，然后在某些炎性反应细胞或细胞因子等的作用下运行并穿过血管壁外渗到继发部位，从而使肿瘤细胞获得了侵袭和转移的能力。
2.1 基质金属蛋白酶（MMPs）
前列腺癌侵袭需要部分降解细胞外基质，很多研究显示高MMPs的表达与前列腺癌患者不良预后相关[9-10]。Nabha等[11]研究发现PC3细胞和骨髓间充质干细胞混合培养能够增加PC3细胞中MMP-12的含量，RNAi干扰PC3细胞MMP-12的表达，能够通过减少骨内Ⅰ型胶原的降解从而降低了PC3细胞的侵袭能力。
2.2 纤溶酶原激活物（plasminogen activator, PA）
纤溶酶原激活物是一种主要的丝氨酸蛋白酶，能降解细胞外基质。Urokinase-type plasminogen activator-Urokinase-type plasminogen activator receptor（uPA-uPAR）的结合能使纤溶酶原转变成纤溶酶，从而降解细胞外基质。通过对前列腺癌样本进行分析发现，上调uPA和uPAR表达与高的肿瘤分级密切相关[12]。Dong等[13]研究显示，将稳定转染uPA siRNA的PC3细胞注射入胎骨中，随后将这些骨植入免疫缺陷小鼠体内，结果发现uPA siRNA组相较于对照组显著的减少了肿瘤负荷和骨降解，表明肿瘤来源的uPA对前列腺肿瘤在骨中的生长起重要作用。
2.3 炎性反应免疫细胞
炎性反应可以通过多种途径影响前列腺的病理生理学改变：包括产生活性氧导致突变形成、产生一些促进肿瘤生长和抑制抗肿瘤免疫的因子，以及通过促进免疫细胞进入肿瘤从而促进肿瘤的转移[14-15]。
调节性T细胞（Treg）被认为是介导肿瘤进程的一类细胞。Treg是CD4+的T细胞，它能抑制效应性T细胞的活性。前列腺癌患者相较于健康人外周血中，CD4+CD25high这类Treg具有更强的免疫抑制功能[16]。除了Tregs，另外一类CD4+ T细胞—Th17细胞，也能够影响前列腺癌的进程和免疫治疗的反应。Th17细胞能够产生促炎因子IL17从而吸引和激活粒细胞和单核细胞[17]。
巨噬细胞在肿瘤的发生发展中发挥着重要作用。在前列腺癌中，增加的肿瘤相关巨噬细胞（tumor-associated macrophage, TAM）可通过激活CCL22-CCR4轴促进前列腺癌转移[18]。尽管TAM在前列腺癌中已明确是增加的，但其促进前列腺癌进程的具体分子机制仍然不清楚。
3 前列腺癌细胞的归巢、存活和定植
骨基质是由95%的Ⅰ型胶原和5%的非胶原蛋白、蛋白多糖组成[19]。骨髓中的细胞不仅包括成骨细胞、破骨细胞，还包括造血细胞、脂肪细胞和免疫细胞。骨基质和骨髓细胞分泌的大量生长因子构成了骨微环境复杂的空间结构和前列腺癌细胞生长所需的肥沃土壤。
3.1 归巢
在转移的后期，肿瘤细胞需要从血管中溢出，进入靶器官定植，肿瘤细胞首先需要黏附到内皮细胞上。研究显示前列腺癌细胞上的E选择素（E-selectin）配体与骨髓内皮细胞上的E-selectin结合，导致黏附[20]。前列腺癌细胞表达CD44与血管细胞黏附分子1（vascular cell adhesion molecule 1, VCAM-1）结合，促进了肿瘤细胞与内皮细胞的黏附，且IL-17、胰岛素和胰岛素样生长因子1（insulin-like growth factor 1, IGF-1）能增强这种黏附作用[21]。另外，播散的肿瘤细胞（disseminated tumor cells, DTCs）表达Annexin Ⅱ受体（Annexin Ⅱ receptor, Annexin ⅡR）与表达Annexin Ⅱ的成骨细胞结合，促进肿瘤细胞骨转移[22]。此外，趋化因子在前列腺癌细胞归巢过程中也发挥着重要作用。表达趋化因子配体16（CXC ligand 16, CXCL16）的前列腺癌细胞通过与骨髓间充质干细胞（bone marrow mesenchymal stem cells, BMSCs）上相应受体CXCR6的结合，诱导BMSCs转变成肿瘤相关的成纤维细胞，产生更多的CXCL12，从而促进肿瘤细胞播散到骨[23]。CXCR4和它的配体CXCL12/SDF1通过归巢信号趋化肿瘤细胞到骨髓微环境中[24]。靶向CXCR4药理学的抑制剂（Plerixafor和CTE9908）能够抑制PC3细胞在骨内的定植生长[25]。这些发现说明抑制骨髓微环境的细胞与肿瘤细胞的相互作用可能成为治疗前列腺癌骨转移的有效方法。
3.2 肿瘤休眠与存活
DTCs在骨髓中存活需要适应新的环境，逃避免疫系统并长期保持休眠状态（约1~10年）。富含半胱氨酸的酸性分泌蛋白（secreted protein acidic and rich in cysteine, SPARC）通过上调骨形成蛋白7（bone morphogenetic protein 7, BMP7）诱导前列腺癌细胞的休眠和复发[26]。研究发现注射BMP7的裸鼠，前列腺癌细胞在骨内的增殖变慢[27]。另外，生长停止特异性蛋白6（growth arrest specific 6, GAS6）是一种络氨酸激酶受体家族成员的配体，它在骨骼中的表达水平也影响了前列腺癌细胞的休眠[28]。
3.3 骨髓定植
肿瘤细胞在骨髓中定植必须脱离休眠状态，骨形成和骨吸收释放和激活存活和生长促进因子导致骨转移的发生。整合素除在肿瘤转移的早期外，还在前列腺癌的骨髓定植中发挥着重要的作用。如前列腺癌细胞表达Integrin α2β1，能够黏附和转移到骨基质上，从而利于肿瘤细胞定植到骨髓中[29]。Cadherin-11，也称为成骨细胞来源的cadherin，高表达在人前列腺癌骨转移组织和前列腺癌骨转移细胞系中[30]。在PC3细胞中使用shRNA干扰Cadherin-11的表达，导致了小鼠骨转移的发生率明显降低[30]。核因子κB受体活化因子配体（receptor activator for nuclear factor-κB ligand, RANKL）在骨重建中是一个重要介导分子。前列腺癌DTCs通过表达甲状旁腺激素相关蛋白（parathyroid hormone-related protein, PTHrP）增强了成骨细胞表达RANKL，从而促进破骨细胞形成，也为DTCs在骨内的转移生长创造了空间[31]。抗RANKL的人源单克隆抗体已经显示能作为一种选择性靶向破骨细胞的药物，通过阻断RANK和RANKL的相互作用来抑制破骨细胞的活性[32]。目前，靶向治疗前列腺癌骨转移主要的策略是：靶向肿瘤细胞高表达基因以降低其与肿瘤微环境细胞的相互作用或者是靶向宿主微环境中的细胞功能。表 1列举了一些调节前列腺癌骨转移重要的蛋白质。
表 1 调节前列腺癌骨转移重要的蛋白质Table 1 Key proteins for regulation of prostate cancer bone metastasis
4 结论及展望
骨转移仍然是引起前列腺癌患者死亡的主要原因。科学家一直在努力寻找有效的治疗手段，然而由于骨髓微环境的复杂性和异质性，直至今天，尚无有效的药物能从根本上治疗前列腺癌骨转移，双磷酸盐仅能在一定程度上限制骨的降解和缓减骨痛，但不能明显改善患者总生存期，总体疗效仍不尽如人意。Ra223是目前唯一一个得到FDA批准用于治疗去势抵抗型前列腺癌骨转移的放射性同位素，它通过模拟钙，在骨基质区域或成骨性骨转移病灶处与羟基磷灰石结合，然后释放高能量的α粒子诱发骨转移细胞DNA损伤和细胞死亡[39]。但其价格昂贵，也不能从根本上解决和防止前列腺癌骨转移的发生。只有我们了解和掌握前列腺癌骨转移发展的过程和分子机制，特别是肿瘤细胞和微环境是如何相互对话和发挥作用，才能更好地发现和验证靶向骨转移的药物。如针对骨转移细胞休眠的特性，我们可以通过抑制骨转移细胞再激活的过程，让肿瘤细胞一直处于休眠状态，达到控制转移的目的；另外肿瘤细胞需要与微环境中的细胞相互作用促进其骨髓定植，因此可以通过抑制剂靶向它们相互作用的蛋白，阻断它们连接的纽带，从而达到抑制骨转移的目的。未来会有更多前列腺癌骨转移潜在的治疗靶点被发现，将会进一步揭示前列腺癌的生物学特征，为前列腺癌的治疗带来更多的手段，最终使患者获益。
Competing interests: The authorsde-clare that they have no competinginter-ests.利益冲突声明：所有作者均声明不存在利益冲突。作者贡献：于 凡：设计研究方案、实验操作及论文撰写王佳琪：部分实验操作、论文撰写及修改高常林：数据分析司嘉鑫：部分实验操作、数据分析吕 微：部分实验操作、论文撰写及修改贾云泷：数据分析、论文审阅及修改刘丽华：论文整体设计、撰写及修改 -
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图 2 miR-1-3p抑制ESCC细胞增殖、迁移、侵袭
Figure 2 miR-1-3p inhibited proliferation, migration, and invasion of ESCC cells
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图 4 STC2是miR-1-3p的靶基因，与患者预后负相关
Figure 4 STC2 was a target gene of miR-1-3p and negatively correlated with prognosis
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图 5 ESCC细胞中miR-1-3p与STC2 mRNA 3'-UTR结合
Figure 5 miR-1-3p sponges STC2 mRNA 3'-UTR in ESCC cells
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图 6 miR-1-3p抑制ESCC细胞内质网应激相关蛋白表达
Figure 6 miR-1-3p inhibited the expression of endoplasmic reticulum stress pathway-related proteins in ESCC cells
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图 7 过表达STC2促进ESCC细胞增殖、迁移和侵袭
Figure 7 STC2 overexpression promoted proliferation, migration and invasion of ESCC cells
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图 9 敲低STC2抑制ESCC细胞增殖、迁移和侵袭
Figure 9 STC2 knockdown inhibited the proliferation, migration, and invasion of ESCC cells
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