Effects of KCNQ1OT1 Gene Knockout Combined with Bruceine D on Proliferation, Migration, and Invasion of Breast Cancer MDA-MB-231 Cells
-
摘要:目的
探讨KCNQ1OT1基因敲除联合鸦胆子素D对乳腺癌MDA-MB-231细胞生物学行为的影响及其机制。
方法CCK8、划痕和Transwell侵袭实验分别检测鸦胆子素D和siKCNQ1OT1对MDA-MB-231细胞活力、迁移和侵袭能力的影响;qRT-PCR检测鸦胆子素D、siKCNQ1OT1对MDA-MB-231细胞中KCNQ1OT1表达的影响;Western blot法检测EMT相关蛋白及CDC42、p-MKK7、MKK7蛋白的表达情况。
结果鸦胆子素D和siKCNQ1OT1处理的MDA-MB-231细胞活力、迁移和侵袭能力受到显著抑制,且二者联用时抑制作用更强(均P < 0.05);鸦胆子素D处理后KCNQ1OT1在MDA-MB-231细胞中的表达下调(均P < 0.05);鸦胆子素D联合siKCNQ1OT1处理组MDA-MB-231细胞中CDC42、p-MKK7、N-cadherin和Vimentin的表达显著下调,E-cadherin的表达上调(均P < 0.05)。
结论鸦胆子素D联合siKCNQ1OT1抑制人乳腺癌MDA-MB-231细胞增殖、迁移、侵袭和EMT,其分子机制可能与CDC42/MKK7信号通路的阻断有关。
Abstract:ObjectiveTo explore the effect of KCNQ1OT1 gene knockout combined with bruceine D on the proliferation, migration, and invasion of breast cancer MDA-MB-231 cells.
MethodsCell Counting Kit-8, wound healing, and Transwell invasion assay were used to detect the effects of bruceine D and siKCNQ1OT1 on the viability, migration, and invasion of MDA-MB-231 cells. Effect of bruceine D and siKCNQ1OT1 on the expression of KCNQ1OT1 in MDA-MB-231 cells was detected by qRT-PCR. Western blot was used to detect the effect of bruceine D and siKCNQ1OT1 on the expression of EMT-related proteins and CDC42, p-MKK7, MKK7 proteins in MDA-MB-231 cells.
ResultsBruceine D and siKCNQ1OT1 could significantly inhibit the viability, migration, and invasion of MDA-MB-231 cells, and the inhibitory effect was enhanced when they were combined (all P < 0.05); bruceine D downregulated the expression of KCNQ1OT1 in MDA-MB-231 cells (all P < 0.05); bruceine D combined with siKCNQ1OT1 significantly decreased CDC42, p-MKK7, N-cadherin, and Vimentin expression in MDA-MB-231 cells and increased the expression of E-cadherin (all P < 0.05).
ConclusionBruceine D combined with siKCNQ1OT1 significantly inhibit the proliferation, migration, invasion, and EMT of human breast cancer MDA-MB-231 cells, and its molecular mechanism may be related to the blocking of CDC42/MKK7 signaling pathway.
-
Key words:
- Breast cancer /
- Bruceine D /
- KCNQ1OT1 /
- Migration /
- Invasion
-
0 引言
环状RNA(circular RNA, circ RNA)起初于植物类病毒中发现的单链环状RNA[1-2]。随后发现人体细胞也存在大量circRNA。环状RNA的含量在一些组织中比线性RNA多,可达10倍以上; circRNA是没有5'末端和3'末端的闭合环状,通过3′, 5′-磷酸二酯键首尾相连接,这样的特殊结构使得环状RNA比线性RNA更具有稳定性[3]; 环状内含子RNA中含有少量miRNA应答元件,含有大量miRNA结合位点,可通过与miRNA结合,调控mRNA的表达和蛋白质的翻译[4]。
环状RNA有几个显著的特征使它们具有成为人类疾病生物标志物的潜能:(1)稳定性:环状RNA分子缺乏的游离5'和3'末端共价闭环结构,具有抗核酸外切酶的RNaseR的能力[5-6]。血浆中环状RNA的平均半衰期超过48 h,远远长于mRNA 10 h的平均值[7],这使环状RNA相比线性RNA更稳定,更适合作为生物标志物。(2)普遍性:有研究认为环状RNA是分布在人类细胞中最普遍的分子[8-9]。(3)特异性:环状RNA以组织特异性和发育阶段特异性方式表达,这使其具有成为特定疾病的潜在生物标志物的能力[10]。许多研究也表明,环状RNA在癌组织和非癌组织之间有明显的差异表达[11]。(4)保守性:研究发现环状RNA在不同物种中具有进化保守性,这意味着在其他动物模型中鉴定的一些环状RNA生物标志物具有转化为人类临床应用的潜力[1, 12]。
环状RNA与线性RNA不同,不是通过RNA剪接的典型模式产生的[13]。环状RNA可以分为三类:外显子环状RNA(ecircRNA)、内含子环状RNA(ciRNA)、外显子-内含子环状RNA(EIciRNAs)[14]。Jeck等提出了两种不同的外显子环化模型,称为“套索驱动的环化”和“内含子驱动的环化”[3]。前一模型与“外显子跳跃”相关,其导致从剪接供体的3'末端到剪接受体的5'末端的共价剪接,产生含有外显子的套索结构。然后通过剪接体连接套索,并在移除内含子后形成ecircRNA。后者则认为侧翼内含子通过反向互补序列配对形成环状结构,然后剪切去除内含子并连接外显子,最终形成ecircRNA或EIciRNA[7, 15]。在随后的研究中,在人类细胞中发现了一种来自内含子的新型环状RNA即ciRNA,并提出了由于脱支失败导致ciRNA形成的新模型[4]。
1 环状RNA与肿瘤
在肿瘤的发生过程中,不同的miRNA分别有类似抑癌基因和原癌基因的作用[16]。Yang等[17]发现循环RNA circ-ITCH通过海绵状miR-17/miR-224抑制膀胱癌进展并调节p21、PTEN的表达; Zhang等[18]发现hsa_circ_0007534的沉默抑制了结肠直肠癌细胞的增殖并诱导细胞凋亡; Xu等[19]发现环状RNA hsa_circ_0001649可调节胆管癌的增殖、迁移和侵袭; Zhu等[20]证实通过调节miR-1324/FZD5/Wnt/β-catenin轴,circRNA circ_0067934可促进肝癌细胞的生长和转移。
环状RNA可通过内源性竞争与miRNA上的靶位点结合,从而增强或抑制肿瘤细胞的增殖、分化和侵袭。Huang等[21]发现circRNA-100338与miR-141-3p结合,可调节乙型肝炎相关肝细胞癌; Han等[22]发现环状RNA circMTO1作为microRNA-9的海绵起到抑制肝细胞癌进展的作用。
环状RNA因其数量多、稳定性好、组织特异性且易提取等特点,成为当前肿瘤界的研究热点。虽然还没有实际应用到疾病诊断中,但随着研究对象的深入及扩展,可以为肿瘤的治疗和预后提供更多的可能性。
2 环状RNA作为肺癌的生物分子标志物
最近的研究表明,环状RNA可能在肺癌的发生发展和预后中起重要作用,可以作为肺癌的生物标志物[23-42]。在这些研究中,hsa_circ_0046264[23]、circRNA-FOXO3[24]、circ_0001649[25]、circRNF13[26]、cir-ITCH[27]被证实在肺癌组织中表达下调,而hsa_circ_0079530[28]、circRNA_100876[29]、hsa_circ_0007385[30]、hsa_circ_0014130[31]、hsa_circ_0012673[32]、circPRKCI[33]、circ_001569[34]、hsa_circ_0007534[35]、circMAN2B2[36]、hsa_circ_0000064[37]、circUBAP2[38]、hsa_circ RNA_103809[39]、circ-BANP[40]、hsa_circ_0013958[41]、circRNA_102231[42]则被证实在肺癌组织中表达上调,这些分子同时也被证实在肿瘤的诊断和预后或进程中具有生物标志物的作用。
2.1 环状RNA作为诊断的生物标志物
Li等[28]分析了92例NSCLC患者样本,发现hsa_circ_0079530在肺癌组织中表达显著上调(P < 0.01),其高表达在肿瘤大小(P=0.001)和淋巴结转移(P=0.038)中差异具有统计学意义,并且hsa_circ_0079530在NSCLC中的诊断ROC曲线下面积为0.756(95%CI: 0.649~0.864; P < 0.01),说明hsa_circ_0079530对肺癌的诊断具有一定的价值。hsa_circ_0013958[41]在49例患者的肺腺癌组织、细胞和血浆中的表达均显著上调,促进癌细胞增殖和侵袭,被认为是早期检测和筛查肺癌的潜在非侵入性生物标志物。circRNA_102231[42]和hsa_circ_0014130[31]也被证实在肺癌组织表达上调,且都具有对肺癌的潜在诊断价值。Zong等[42]对57例肺腺癌患者样本进行分析,诊断的ROC曲线下面积(AUC)为0.897,敏感度和特异性分别为81.2%和88.7%。Zhang等[31]对46例非小细胞肺癌患者进行分析,发现hsa_circ_0014130诊断的ROC曲线下面积为0.878,最佳截断值为0.573,敏感度和特异性分别为87.0%和84.8%。
2.2 环状RNA与TNM分期
研究显示,差异表达的环状RNA与TNM分期系统有着密切联系,有望成为肺癌TNM分期的生物标志物[25-26, 28-29, 31, 33-35, 37, 40-41],见表 1。
表 1 环状RNA在肺癌TNM分期中的相关情况Table 1 Circular RNA in TNM staging of lung cancer现阶段的研究中,差异表达的环状RNA与肺癌TNM分期中的N分期以及Ⅰ~Ⅱ期相关性较强,环状RNA的差异表达可能与肺癌的淋巴结受累情况有关。因此,环状RNA很有可能参与了肺癌的进展、转移,环状RNA也有望成为肺癌TNM分期的生物标志物。
2.3 环状RNA作为预后的生物标志物
Liu等[39]发现hsa_circRNA_103809在肺癌组织中显著上调,进行Kaplan-Meier曲线分析,发现患者中hsa_circRNA_103809的较高表达与较低的存活率相关,说明hsa_circRNA_103809可作为肺癌预后的生物标志物。同时,另一项研究也发现[29],circRNA_100876在肺癌组织中的表达显著上调,并且具有高circRNA_100876表达的NSCLC患者的总存活时间显著短于具有低circRNA_100876表达的患者。circ-BANP[40]、circ_001569[34]、hsa_circ_0007534[35]也被证实可以作为NSCLC患者预后检测的潜在生物标志物。
2.4 环状RNA与增殖、凋亡、侵袭和迁移
环状RNA与肺癌的侵袭和迁移的相关性较强,可能参与了肺癌侵袭和迁移相关的信号通路,影响了肺癌的侵袭和迁移[23-28, 30, 33-41],因此,环状RNA也有望成为肺癌治疗的靶点,成为肺癌治疗的生物标志物,见表 2。
表 2 环状RNA与肺癌细胞增殖、凋亡、侵袭和迁移的关系Table 2 Association between circular RNA and proliferation, apoptosis, invasion, migration of lung cancer cells3 问题和展望
环状RNA大量的研究目前仍停留在基础研究中,尚缺乏转化性研究的报道。现阶段尚未将肺癌患者中差异表达的环状RNA或其他肺癌生物标志物进行联合研究。肺癌研究领域环状RNA研究利用的标本种类过于单一,大部分研究者采用的仍是肺癌患者的癌组织以及癌旁组织,目前尚缺乏大范围大样本的肺癌环状RNA研究。环状RNA也尚无统一的命名系统,极易出现不同领域学者在研究同一个环状RNA时采用不同的称呼,从而造成混乱。
在临床应用方面,环状RNA也有更多研究价值,其闭合环结构在体液中更稳定,在血浆[43]、唾液[44-45]以及外泌体中都稳定存在[46-47],在多种疾病的发生发展中发挥重要作用,并且在肿瘤诊断、治疗和预后等方面有巨大潜能[48],因此具有成为诊断生物标志物的可能。环状RNA也有一些诊断方面的缺点:一些环状RNA需要患者的组织进行诊断,这会给患者带来创伤。其次,检测组织或外泌体中的环状RNA比现有检查更昂贵,限制了环状RNA作为生物标志物的广泛使用。虽然环状RNA的产生及其确定的功能尚不完全清楚,但随着环状RNA对肿瘤的影响机制的进一步研究,更多在肺癌中差异表达的环状RNA将被发现,未来将在疾病预防、诊断和治疗中发挥越来越重要的作用。
Competing interests: The authors declare that they have no competing interests.利益冲突声明:所有作者均声明不存在利益冲突。作者贡献:龙凤:实验设计、经费支持、统计分析,文章构思、修订及撰写赵玉:实验设计与实施、数据采集、统计分析及解释、文章撰写黄勇:实验指导刘晓燕:文章修订及审校周旋、李雪、叶海琳:文章审校 -
表 1 siKCNQ1OT1序列
Table 1 siKCNQ1OT1 sequences
-
[1] Sung H, Ferlay J, Siegel RL, et al. Global cancer statistics 2020: Globocan estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2021, 71(3): 209-249. doi: 10.3322/caac.21660
[2] Borri F, Granaglia A. Pathology of triple negative breast cancer[J]. Semin Cancer Biol, 2021, 72: 136-145. doi: 10.1016/j.semcancer.2020.06.005
[3] Mahtani R, Kittaneh M, Kalinsky K, et al. Advances in therapeutic approaches for triple-negative breast cancer[J]. Clin Breast Cancer, 2021, 21(5): 383-390. doi: 10.1016/j.clbc.2020.12.011
[4] Liu TJ, Hu S, Qiu ZD, et al. Anti-Tumor mechanisms associated with regulation of Non-Coding RNA by active ingredients of chinese medicine: A review[J]. Front Oncol, 2020, 10: 634936.
[5] Zhao LJ, Li C, Zhang Y, et al. Phytochemical and biological activities of an anticancer plant medicine: Brucea javanica[J]. Anticancer Agents Med Chem, 2014, 14(3): 440-458. doi: 10.2174/18715206113136660336
[6] Tan BQ, Huang YY, Lan LH, et al. Bruceine D induces apoptosis in human non-small cell lung cancer cells through regulating JNK pathway[J]. Biomed Pharmacother, 2019, 117: 109089. doi: 10.1016/j.biopha.2019.109089
[7] Lau ST, Lin ZX, Liao Y, et al. Bruceine D induces apoptosis in pancreatic adenocarcinoma cell line PANC-1 through the activation of p38-mitogen activated protein kinase[J]. Cancer Lett, 2009, 281(1): 42-52. doi: 10.1016/j.canlet.2009.02.017
[8] Cheng ZY, Yuan X, Qu Y, et al. Bruceine D inhibits hepatocellular carcinoma growth by targeting β-catenin/jagged1 pathways[J]. Cancer Lett, 2017, 403: 195-205. doi: 10.1016/j.canlet.2017.06.014
[9] Luo C, Wang Y, Wei C, et al. The anti-migration and anti-invasion effects of Bruceine D in human triple-negative breast cancer MDA-MB-231 cells[J]. Exp Ther Med, 2020, 19(1): 273-279.
[10] Cagle P, Qi Q, Niture S, et al. KCNQ1OT1: an oncogenic long noncoding RNA[J]. Biomolecules, 2021, 11(11): 1602. doi: 10.3390/biom11111602
[11] Ren ZY, Xu YF, Wang X, et al. KCNQ1OT1 affects cell proliferation, invasion, and migration through a miR-34a/Notch3 axis in breast cancer[J]. Environ Sci Pollut Res Int, 2022, 29(19): 28480-28494. doi: 10.1007/s11356-021-18434-x
[12] 王菲菲, 符合, 任进, 等. siRNA药物研究进展[J]. 中国新药杂志, 2022, 31(5): 427-434. doi: 10.3969/j.issn.1003-3734.2022.05.004 Wang FF, Fu H, Ren J, et al. Research advances on siRNA drug[J]. Zhongguo Xin Yao Za Zhi, 2022, 31(5): 427-434. doi: 10.3969/j.issn.1003-3734.2022.05.004
[13] Feng L, Li HQ, Li F, et al. LncRNA KCNQ1OT1 regulates microRNA-9-LMX1A expression and inhibits gastric cancer cell progression[J]. Aging (Albany NY), 2020, 12(1): 707-717.
[14] Yin XH, Jiang AM, Ma ZB, et al. Long non-coding RNA-KCNQ1OT1 mediates miR-423-5p/microfibril-associated protein 2 axis in colon adenocarcinoma[J]. Histol Histopathol, 2021, 36(10): 1099-1110.
[15] Yuan F, Lou ZP, Zhou ZF, et al. Long non-coding RNA KCNQ1OT1 promotes nasopharyngeal carcinoma cell cisplatin resistance via the miR-454/USP47 axis[J]. Int J Mol Med, 2021, 47(4): 54. doi: 10.3892/ijmm.2021.4887
[16] Zhang Y, Tang LL. The Application of lncRNAs in cancer treatment and diagnosis[J]. Recent Pat Anticancer Drug Discov, 2018, 13(3): 292-301. doi: 10.2174/1574892813666180226121819
[17] Wu YY, Bi QJ, Han R, et al. Long noncoding RNA KCNQ1OT1 is correlated with human breast cancer cell development through inverse regulation of hsa-miR-107[J]. Biochem Cell Biol, 2020, 98(3): 338-344. doi: 10.1139/bcb-2019-0271
[18] Wang J, Wong YK, Liao F. What has traditional Chinese medicine delivered for modern medicine?[J]. Expert Rev Mol Med, 2018, 20: e4. doi: 10.1017/erm.2018.3
[19] Sin ZW, Bhardwaj V, Pandey AK, et al. A brief overview of antitumoral actions of bruceine D[J]. Explor Target Antitumor Ther, 2020, 1(4): 200-217. doi: 10.37349/etat.2020.00013
[20] Zhang J, Xu HX, Cho WCS, et al. Brucein D augments the chemosensitivity of gemcitabine in pancreatic cancer via inhibiting the Nrf2 pathway[J]. J Exp Clin Cancer Res, 2022, 41(1): 90. doi: 10.1186/s13046-022-02270-z
[21] Mohan CD, Liew YY, Jung YY, et al. Brucein D modulates MAPK signaling cascade to exert multi-faceted anti-neoplastic actions against breast cancer cells[J]. Biochimie, 2021, 182: 140-151. doi: 10.1016/j.biochi.2021.01.009
[22] Wang M, Dai M, Wang D, et al. The regulatory networks of the Hippo signaling pathway in cancer development[J]. J Cancer, 2021, 12(20): 6216-6230. doi: 10.7150/jca.62402
[23] Lu H, Guo Y, Gupta G, et al. Mitogen-activated protein kinase (MAPK): New insights in Breast Cancer[J]. J Environ Pathol Toxicol Oncol, 2019, 38(1): 51-59. doi: 10.1615/JEnvironPatholToxicolOncol.2018028386
[24] Gillies TE, Pargett M, Silva JM, et al. Oncogenic mutant RAS signaling activity is rescaled by the ERK/MAPK pathway[J]. Mol Syst Biol, 2020, 16(10): e9518.
[25] Maldonado MDM, Dharmawardhane S. Targeting rac and cdc42 GTPases in cancer[J]. Cancer Res, 2018, 78(12): 3101-3111. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-18-0619
[26] Foltz IN, Gerl RE, Wieler JS, et al. Human mitogen-activated protein kinase kinase 7 (MKK7) is a highly conserved c-Jun N-terminal kinase/stress-activated protein kinase (JNK/SAPK) activated by environmental stresses and physiological stimuli[J]. J Biol Chem, 1998, 273(15): 9344-9351. doi: 10.1074/jbc.273.15.9344
[27] Xiao XH, Lv LC, Duan J, et al. Regulating cdc42 and its signaling pathways in cancer: small molecules and microRNA as new treatment candidates[J]. Molecules, 2018, 23(4): 787. doi: 10.3390/molecules23040787
[28] Wang X, Zhang J, Liu X, et al. Long noncoding RNAs in endometriosis: biological functions, expressions, and mechanisms[J]. J Cell Physiol, 2021, 236(1): 6-14. doi: 10.1002/jcp.29847
[29] Zhong CH, Tao B, Chen YT, et al. B7-H3 regulates glioma growth and cell invasion through a JAK2/STAT3/Slug-dependent signaling pathway[J]. Onco Targets Ther, 2020, 13: 2215-2224. doi: 10.2147/OTT.S237841
[30] Serrano-Gomez SJ, Maziveyi M, Alahari SK. Regulation of epithelial-mesenchymal transition through epigenetic and post-translational modifications[J]. Mol Cancer, 2016, 15: 18. doi: 10.1186/s12943-016-0502-x