5′/3′ Imbalance Strategy for qRT-PCR to Detect ALK Fusion Mutation in Primary Lung Adenocarcinoma in Gannan Region
-
摘要:目的
探讨赣南地区原发性肺腺癌患者间变淋巴瘤激酶（ALK）融合基因的特点，科学指导此类患者优选靶向用药。
方法采取不平衡法检测233例原发性肺腺癌患者ALK融合基因的表达情况，回顾性分析其临床病理特征。
结果有ALK融合基因表达者21例，表达率为9.01%（21/233）。女性、N1-3患者ALK融合基因表达率显著高于男性、N0患者（P < 0.05）；ALK融合基因在无吸烟史、年龄 < 55岁、M1期患者以及新鲜活检标本中的表达率相对较高，但未达统计学意义（P > 0.05)）；ALK融合基因的表达与TNM分期、T分期、是否手术治疗以及肿瘤分布位置均无相关性（P > 0.05）。此外，在153例M1期病例亚组分析中，未发现ALK融合突变与肺癌常见部位（骨、脑、对侧肺、胸膜播散、肾上腺及肝）转移的相关性（P > 0.05）。
结论赣南地区原发性肺腺癌中ALK融合基因表达率较高，好发于女性和有淋巴结转移的患者。
Abstract:ObjectiveTo explore the characteristics of ALK fusion gene in patients with primary lung adenocarcinoma in Gannan region, with hopes of scientifically guiding such patients towards selecting targeted drugs.
Methods5′/3′ imbalance strategy for qRT-PCR was used to detect the expression of ALK fusion gene in 233 cases of primary pulmonary adenocarcinoma and the clinical pathological characteristics were analyzed.
ResultsThe expression rate of ALK fusion genes was 9.01% (21/233). The expression rate of ALK fusion gene in female and N1-3 patients was significantly higher than that in male and N0 patients (P < 0.05); The expression rate of ALK fusion gene in patients with no smoking history, age < 55 years, M1 stage and fresh biopsy specimens was relatively high (P > 0.05); The expression of ALK fusion gene was not correlated with TNM stage, T stage, surgical treatment or tumor distribution location (P > 0.05). Moreover, in the subgroup analysis of 153 M1-stage cases, no correlation was found between the expression of ALK fusion gene and the metastasis of common sites of lung cancer (bone, brain, opposite lung, pleural dissemination adrenal glands and liver) (P > 0.05).
ConclusionThe expression rate of ALK fusion gene in primary lung adenocarcinoma in Gannan region is relatively high, which is common in female patients with lymph node metastasis.
-
0 引言
乳腺癌是全球范围内女性发病率最高的一种恶性肿瘤，在女性癌症相关死因中居第二位[1]。中国乳腺癌的发病率占世界总发病率的12.2%，死亡率高达9.6%，严重危害我国女性的身体健康和生活质量[2]。三阴性乳腺癌（triple negative breast cancer, TNBC）是指雌激素受体（ER）、孕激素受体（PR）和人类表皮生长因子受体2（HER2）均呈阴性表达的乳腺癌，恶性程度高，容易发生转移[3-4]。虽然目前对乳腺癌的诊断及治疗已取得一定成效，但三阴性乳腺癌的患者在1~3年内极易复发，并且大多于治疗后的5年内死亡[5]。针对以上问题，快速、准确地找到TNBC更有效的生物靶标成为关键所在。
环状RNA（circRNA）是生物体内广泛存在的一类具有调节功能的非编码RNA[6]。它们一般头尾连接形成环状结构，因为不含5' 末端帽和3' 末端poly（A）尾而表达稳定[7-8]。第一个环状RNA ciRS-7（CDR1as）由Hansen等首次发现，其可作为miR-7海绵在大脑中稳定表达并发挥重要的基因调控功能[9]。最近有研究发现，ciRS-7敲除后的体内动物模型出现了miR-7和miR-671表达失调，最终影响哺乳动物的大脑发育功能[10]。ciRS-7主要通过miRNA海绵的方式调节miR-7的表达，进而影响肿瘤的发生发展过程[9]。越来越多的研究发现环状RNA可调节人类多种肿瘤的进展。三阴性乳腺癌作为一类高度恶性的肿瘤，其潜在的分子机制仍有待阐明，而且环状RNA对其发病的调控作用尚未见报道。
本研究旨在探讨环状RNA ciRS-7在三阴性乳腺癌（TNBC）中的表达及其对细胞侵袭和迁移的影响，为寻找TNBC新型肿瘤生物标志物和治疗靶标奠定基础。
1 资料与方法
1.1 临床资料
选取2016年9月—2017年10月在河北医科大学第四医院接受手术治疗的乳腺癌患者132例，其中Luminal型89例、TNBC25例和HER2过表达型18例。所有患者均未接受术前化疗和放疗。所有肿瘤组织均由经验丰富的病理学专家证实。所有患者均签署了知情同意书，研究方案征得医院伦理委员会批准。
1.2 细胞株及主要试剂
人乳腺癌细胞株MDA-MB-231、MDA-MB-453、BT-549和MCF-7购自美国ATCC细胞库。RPMI 1640培养基、胰蛋白酶购自美国Gibco公司，胎牛血清购自上海依科赛生物制品有限公司。TRIzol购自美国Invitrogen公司，Platinum SYBR Super Mix试剂、Fu GENE HD转染试剂及反转录试剂盒均购自美国Promega公司，PCR引物购自英潍捷基贸易有限公司。Transwell小室（孔径3.0 μm）购自美国Corning公司，Matrigel基质胶购自美国BD公司。ciRS-7 siRNA购自广州锐博生物科技公司。
1.3 qRT-PCR法检测ciRS-7在乳腺癌组织和细胞中的表达
乳腺癌组织和细胞用TRIzol裂解后提取总RNA，按照Promega反转录试剂盒说明书制备cDNA，然后进行实时荧光定量PCR扩增，以GAPDH为内参，环状RNA ciRS-7来源于CDR1as，于是本实验设计两种引物，一种为发散引物，可扩增出环状转录本ciRS-7，另一种为聚合引物，能扩增CDR1as的线性转录本。然后以任意两例TNBC组织和两种TNBC细胞系（MDA-MB-231和BT-549）的cDNA和基因组DNA（gDNA）为模板，进行普通PCR反应。目的基因的引物序列及反应条件见表 1。利用各实验组目的基因及内参基因的Ct值，按照公式ΔCt=Ct目的基因-Ct内参基因，以2-ΔΔCt法计算目的基因的相对表达量。
表 1 PCR引物序列及反应条件Table 1 PCR primer sequences and reaction requirement
1.4 RT-PCR法检测ciRS-7在TNBC细胞中的表达
如1.3提取细胞总RNA后反转录为cDNA，PCR扩增，GAPDH为内参，目的基因的引物序列及反应条件，见表 1。扩增产物经2%琼脂糖凝胶电泳分离后进行核酸显色。
1.5 细胞转染
人TNBC细胞株MDA-MB-231和BT-549用含10%胎牛血清、100 u/ml青霉素和100 μg/ml链霉素的RPMI 1640培养液培养，于37℃、5%CO2体积分数的培养箱中。按Fu GENE HD转染试剂说明书方法将ciRS-7 siRNA转染至MDA-MB-231和BT-549细胞中，并在两种细胞中分别转染control siRNA作为对照。
1.6 划痕实验检测敲低ciRS-7后的细胞迁移能力
收集对数期的MDA-MB-231和BT-549细胞，调整细胞密度为5×105个每毫升，取2 ml接种于6孔板，并在6孔板背面划5条平行线做标记，24 h后用200 μl枪头在细胞中划2条垂直于背面平行线的直线，PBS冲洗2次，加入2 ml无胎牛血清的RPMI 1640培养液，于0、24 h在倒置显微镜下观察细胞向划痕中间迁移的距离并拍照，每组实验设3个平行孔。
1.7 Transwell小室检测敲低ciRS-7后的细胞迁移和侵袭能力
取对数期生长的细胞悬液，加入Transwell小室的上室（2×105个/小室），小室上铺胶检测侵袭能力，不铺胶者检测迁移能力; 下室加入600 μl含10%胎牛血清的RPMI 1640培养液，常规培养48 h，用棉签擦净上室细胞，PBS清洗后，结晶紫染色，倒置相差显微镜下（×200）观察并拍照，随机选取5个视野，计数穿膜细胞数。
1.8 动物实验
所有动物实验均经河北医科大学第四医院动物保护委员会批准。选用4周龄BALB/c裸鼠，随机分为2组（每组8只）。用si ciRS-7或对照siRNA转染的MDA-MB-231细胞（每只小鼠5×106个细胞）分别经尾静脉注射BALB/ c裸鼠中。然后将50 OD胆固醇修饰的siciRS-7或对照siRNA经尾静脉注射到BALB/c裸鼠中（每周2次）。2月后处死裸鼠，解剖肺组织。肉眼检查肺的外观，然后进行HE染色，并在显微镜下观察每个视野肺组织切片的转移克隆数。
上述实验均重复3次。
1.9 统计学方法
本实验数据应用SPSS21.0软件进行统计分析，计量资料以均数±标准（x±s）表示，两组之间均数比较采用t检验，P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 环状RNA ciRS-7在TNBC组织和细胞中稳定高表达
结果显示，环状转录本ciRS-7只能用发散引物在cDNA中检测到，gDNA中未见扩增产物; 但是线性形式的CDR1as在cDNA和gDNA中均出现了扩增产物，见图 1A、B。这说明本研究使用的环状RNA ciRS-7引物的有效性，并进一步验证了其在TNBC中具有一定的表达丰度。qRT-PCR检测结果显示，TNBC样本中ciRS-7的相对表达量为（6.52±0.38），显著高于Luminal型（1.56±0.17）（P < 0.001）和HER2过表达型乳腺癌组织（2.27±0.66）（P < 0.001）以及癌旁正常组织（0.83±0.09）（P < 0.001），见图 1C。ciRS-7在TNBC细胞系MDA-MB-231和BT-549中高表达，但在Lunimal型MCF-7细胞和HER2过表达型MDA-MB-453细胞中低表达，见图 1D。qRT-PCR方法进一步证实ciRS-7对RNase R的抗性，MDA-MB-231和BT-549细胞经RNase R处理后CDR1线性基因表达明显下降，而环状形式的ciRS-7无明显变化，见图 1E。综上表明，环状RNA ciRS-7在TNBC组织和细胞中稳定高表达。
![]()
图 1 环状RNA ciRS-7在乳腺癌组织和细胞中的表达Figure 1 Expression of circular RNA ciRS-7 in breast cancer tissues and cell linesA: the expression of ciRS-7 in two cases of TNBC tissues detected by RT-PCR; B: the expression of ciRS-7 in MDA-MB-231 and BT-549 cells detected by RT-PCR; C: the expression of ciRS-7 in 132 cases of breast cancer tissue and paired normal adjacent tissues detected by qRT-PCR; D: the expression of ciRS-7 in MDA-MB-231, BT-549, MCF-7 and MDA-MB-453 cells detected by qRT-PCR; E: the expression of ciRS-7 with RNase R treatment in MDA-MB-231 and BT-549 cells detected by qRT-PCR; **: P < 0.01, ***: P < 0.0012.2 环状RNA ciRS-7与乳腺癌患者临床病理特征的关系
为方便分析数据，将所有乳腺癌组织分类为ciRS-7高表达组和低表达组，使用132例乳腺癌患者组织中ciRS-7的平均相对表达量（4.82）作为所有乳腺癌患者的临界阈值。132例乳腺癌患者中ciRS-7高表达组32例，低表达组100例; ciRS-7表达与患者年龄、肿瘤直径和病理分级无关（均P > 0.05），而与分子分型、肿瘤浸润和淋巴结转移明显相关（均P < 0.05），见表 2。由此推断ciRS-7可能与乳腺癌患者的病情进展密切相关，于是本实验重点研究高表达ciRS-7且恶性度高的TNBC型乳腺癌。
表 2 ciRS-7表达与132例乳腺癌患者临床病理学指标的相关性Table 2 Correlation between ciRS-7 expression and clinicopathological parameters of 132 breast cancer patients
2.3 敲低ciRS-7可能抑制TNBC细胞的迁移能力
划痕实验结果显示siRNA介导的ciRS-7敲低组MDA-MB-231和BT-549细胞的迁移能力明显被抑制，见图 2A;转染ciRS-7 siRNA后两株细胞的ciRS-7表达明显降低（均P=0.000），见图 2B，证明本研究中针对环状RNA ciRS-7 siRNA干扰有效; 实验组和对照组两株细胞迁移面积变化百分率差异具有统计学意义，见图 2C（均P=0.000）。综上表明siRNA介导的ciRS-7敲低可能抑制TNBC细胞的迁移能力。
![]()
图 2 沉默ciRS-7对MDA-MB-231和BT-549细胞迁移的影响Figure 2 Effect of silencing ciRS-7 on migration of MDA-MB-231 and BT-549 cellsA: the migration of MDA-MB-231 and BT-549 cells in each group detected by wound healing assay; B: the expression of ciRS-7 after silencing ciRS-7 in MDA-MB-231 and BT-549 cells detected by qRT-PCR; C: the migration area in each group of MDA-MB-231 and BT-549 cells; ***: P < 0.001, compared with si ctrl group2.4 敲低ciRS-7可能抑制TNBC细胞的迁移和侵袭能力
与si ctrl组相比，si ciRS-7处理组MDA-MB-231和BT-549细胞的穿膜数目明显减少，见图 3A。MDA-MB-231和BT-549中对照组和实验组的迁移和侵袭细胞数差异均有统计学意义（均P=0.000），见图 3B、C。
![]()
图 3 沉默ciRS-7对MDA-MB-231和BT-549细胞迁移和侵袭的影响Figure 3 Effect of silencing ciRS-7 on migration and invasion of MDA-MB-231 and BT-549 cellsA: the migration and invasion of MDA-MB-231 and BT-549 cells in each group detected by Transwell assay; B: the number of migrated and invaded MDA-MB-231 cells in each group; C: the number of migrated and invaded BT-549 cells in each group; ***: P < 0.001, compared with si ctrl group2.5 敲低ciRS-7可能抑制裸鼠体内TNBC的肺转移
通过尾静脉注射建立MDA-MB-231细胞裸鼠肺转移模型。与si ctrl组相比，si ciRS-7组裸鼠的肺转移能力明显较弱，见图 4A。显微镜下观察si ciRS-7转染组的裸鼠形成的肺转移克隆数比si ctrl转染组的明显减少（P=0.000067），见图 4B。表明敲低ciRS-7可能抑制裸鼠体内TNBC的肺转移能力。
![]()
图 4 沉默ciRS-7对裸鼠体内TNBC的肺转移的影响Figure 4 Effect of silencing ciRS-7 on lung metastasis of TNBC in nude miceA: the metastasis clones of lung tissue in nude mice; Left: the appearance of lungs by naked eyes; Middle: HE staining(40×); Right: HE staining(100×); B: the number of clones for lung metastasis in each group; ***: P < 0.001, compared with si ctrl group3 讨论
本课题组检测了132例乳腺癌患者病理组织标本及配对癌旁正常组织中ciRS-7的表达水平，分析ciRS-7与乳腺癌患者临床病理特征之间的关系。另外检测了乳腺癌细胞系中ciRS-7的表达水平，通过体外细胞功能实验检测ciRS-7对TNBC细胞迁移和侵袭能力的影响，体内动物实验探究敲低ciRS-7后TNBC发生肺转移的变化，为寻找TNBC的新型肿瘤生物标志物和治疗靶标奠定基础。
由于当时研究技术的局限性，环状RNA在发现之初被认为是错误剪接或内含子套索过程中形成的副产物[11-13]。近年来随着RNA测序（RNA-seq）技术的不断发展，大量环状RNA在小鼠、线虫及人类细胞中被检测到[14-15]。circRNA的功能包括与AGO蛋白结合调控mRNA的转录翻译过程[6]，与RNA结合蛋白相互作用参与转录后调控[16]。还有一类位于细胞核内的环状RNA通过抑制内含子环化正向调控其宿主基因的表达[17]。但目前研究最为深入的还是其作为miRNA分子“海绵”发挥生物学功能。
有报道称ciRS-7可作为miR-7的分子海绵参与多种癌症相关通路影响肿瘤的发生发展[18]。胃癌中ciRS-7表达上调，进而影响miR-7下游的PTEN/PI3K/AKT信号通路，促进癌症的发生发展[19]。食管鳞状细胞癌中过表达的ciRS-7可通过靶向miR-876-5p，解除其对肿瘤相关抗原MAGE-A家族的抑制作用从而加速ESCC进程[20]。结肠癌中ciRS-7可直接结合miR-7影响其下游的EGFR-RAF1信号通路，发挥关键的促癌作用[21]。ciRS-7还可通过充当miRNA分子海绵在非小细胞肺癌和膀胱癌的进展中发挥重要作用[22-23]。
然而，ciRS-7在乳腺癌中的研究未见报道。三阴性乳腺癌作为乳腺癌中具有高度转移潜能的分子类型，其调控机制至今尚未阐明。本研究采用qRT-PCR技术检测了4种乳腺癌细胞系中ciRS-7的表达水平，发现三阴性乳腺癌细胞系中ciRS-7的表达明显高于其他类型的乳腺癌细胞系，这提示ciRS-7可能与TNBC的高侵袭转移能力相关。
为此本课题组设计了细胞迁移和侵袭试验及裸鼠转移瘤实验进一步探究ciRS-7对TNBC的侵袭和转移能力的影响。结果表明环状RNA ciRS-7在体内和体外实验中均可促进TNBC细胞的侵袭迁移水平。但其具体的分子机制尚未研究透彻，猜测其很可能通过miRNA分子海绵机制发挥调控作用，这有待在今后的研究中得到证实。
致谢: 感谢鼎晶医学检验所为本研究提供实验部分的支持与帮助！Competing interests: The authors declare that they have no competing interests.作者贡献：钟炜祥：实验设计、实施及评估，数据统计分析及文章执笔韦晰凤：筛选病例，收集、整理及汇总病例临床资料及其基因检测结果，文章审校 -
表 2 赣南地区肺腺癌患者ALK基因融合与临床病理特征的关系
Table 2 Relation between ALK fusion and clinicopathological characteristics of patients with lung adenocarcinoma in Gannan region
下载: 导出CSV
表 3 赣南地区153例M1期肺腺癌患者ALK基因融合与肺癌常见部位转移的关系
Table 3 Relation between ALK fusion and metastasis of common sites of lung cancer in 153 M1-stage patients with lung adenocarcinoma in Gannan region
下载: 导出CSV
-
[1] 李秀忠, 赵志军, 郭雅琪, 等. 宁夏地区非小细胞肺癌EML4-ALK融合基因的表达特征分析[J]. 宁夏医学杂志, 2019, 41(11): 970-972. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-NXYX201911006.htm Li XZ, Zhao ZJ, Guo YQ, et al. Analysis of expression characteristics of EML4-ALK fusion gene in non-small cell lung cancer in Ningxia[J]. Ningxia Yi Xue Za Zhi, 2019, 41(11): 970-972. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-NXYX201911006.htm
[2] 刘光峨, 杨玲, 李佩洁, 等. 贵州黔北地区922例非小细胞肺癌EGFR、ALK、ROS-1基因突变状态及其临床病理特征分析[J]. 中华肿瘤防治杂志, 2020, 27(21): 1691-1697. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-QLZL202021001.htm Liu GE, Yang L, Li PJ, et al. Analysis of the mutaiton status of EGFR, ALK and ROS-1 genes and their clinicopathological characteristics in 922 cases of non-small cell lung cancer in northern Guizhou province[J]. Zhonghua Zhong Liu Fang Zhi Za Zhi, 2020, 27(21): 1691-1697. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-QLZL202021001.htm
[3] 王娟, 苏国苗, 潘国庆, 等. 云南地区非小细胞肺癌EGFR、ALK和ROS1基因突变联合检测[J]. 昆明医科大学学报, 2020, 41(9): 1-6. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-KMYX202009001.htm Wang J, Su GM, Pan GQ, et al. Combined Detections and Analysis to the Genetic Mutation of EGFR, ALK and ROS1 in Non-small Cell Lung Cancer in Yunnan[J]. Kunming Yi Ke Da Xue Xue Bao, 2020, 41(9): 1-6. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-KMYX202009001.htm
[4] 冯征, 文苗苗, 王雪娇, 等. 中国西北地区非小细胞肺癌EGFR、ALK、ROS1基因突变和临床病理特征分析[J]. 临床肿瘤学杂志, 2021, 26(1): 29-33. doi: 10.3969/j.issn.1009-0460.2021.01.005 Feng Z, Wen MM, Wang XJ, et al. Mutation analysis and clinicopathological features of EGFR, ALK, ROS1 in patients with non-small cell lung cancer in northwest of China[J]. Lin Chuang Zhong Liu Xue Za Zhi, 2021, 26(1): 29-33. doi: 10.3969/j.issn.1009-0460.2021.01.005
[5] Golding B, Luu A, Jones R, et al. The function and therapeutic targeting of anaplastic lymphoma kinase (ALK) in non-small cell lung cancer(NSCLC)[J]. Mol Cancer, 2018, 17(1): 52. doi: 10.1186/s12943-018-0810-4
[6] Su Y, Long X, Song Y, et al. Distribution of ALK Fusion Variants and Correlation with Clinical Outcomes in Chinese Patients with Non-Small Cell Lung Cancer Treated with Crizotinib[J]. Target Oncol, 2019, 14(2): 159-168. doi: 10.1007/s11523-019-00631-x
[7] 祁春艳, 吴涛, 齐晓光. ALK融合基因阳性肺腺癌患者耐药核心基因鉴定及药物靶点分析[J]. 肿瘤防治研究, 2021, 48(5): 451-456. doi: 10.3971/j.issn.1000-8578.2021.20.1206 Qi CY, Wu T, Qi XG. Identification of Drug-resistance Core Genes and Drug Targets in Lung Adenocarcinoma Patients Harboring ALK Fusion Gene[J]. Zhong Liu Fang Zhi Yan Jiu, 2021, 48(5): 451-456. doi: 10.3971/j.issn.1000-8578.2021.20.1206
[8] Wu Y, Lu S, Lu Y, et al. Results of PROFILE 1029, a Phase ⅢComparison of First-Line Crizotinib versus Chemotherapy in East Asian Patients with ALK -Positive Advanced Non–Small Cell Lung Cancer[J]. J Thorac Oncol, 2018, 13(10): 1539-1548. doi: 10.1016/j.jtho.2018.06.012
[9] Zhou C, Kim SW, Reungwetwattana T, et al. Alectinib versus crizotinib in untreated Asian patients with anaplastic lymphoma kinase-positive non-small-cell lung cancer (ALESIA): a randomised phase 3 study[J]. Lancet Respir Med, 2019, 7(5): 437-446. doi: 10.1016/S2213-2600(19)30053-0
[10] Shaw AT, Bauer TM, de Marinis F, et al. First-Line Lorlatinib or Crizotinib in AdvancedALK-Positive Lung Cancer[J]. N Engl J Med, 2020, 383(21): 2018-2029. doi: 10.1056/NEJMoa2027187
[11] Solomon B. First-line treatment options for ALK-rearranged lung cancer[J]. Lancet, 2017, 389 (10072): 884-886. doi: 10.1016/S0140-6736(17)30124-1
[12] 王惠宇, 夏丹丹, 王润洁, 等. 非小细胞肺癌患者EML4-ALK和EGFR共存突变的检测及其与临床病理特征的关系[J]. 现代肿瘤医学, 2018, 26(19): 3058-3061. doi: 10.3969/j.issn.1672-4992.2018.19.015 Wang HY, Xia DD, Wang RJ, et al. Detection of co-existing mutation of EML4-ALK and EGFR and its relationship with clinicopathological features in patients with non-small cell lung cancer[J]. Xian Dai Zhong Liu Yi Xue, 2018, 26(19): 3058-3061. doi: 10.3969/j.issn.1672-4992.2018.19.015
[13] Ke L, Xu M, Jiang X, et al. Epidermal Growth Factor Receptor (EGFR) Mutations and Anaplastic Lymphoma Kinase/Oncogene or C-Ros Oncogene 1 (ALK/ROS1) Fusions Inflict Non-Small Cell Lung Cancer (NSCLC) Female Patients Older Than 60 Years of Age[J]. Med Sci Monit, 2018, 24: 9364-9369. doi: 10.12659/MSM.911333
[14] 靳科, 詹钦文, 刘星, 等. 非小细胞肺癌雌激素受体表达与性别关系的Meta分析[J]. 现代肿瘤医学, 2019, 27(23): 4205-4209. doi: 10.3969/j.issn.1672-4992.2019.23.018 Jin K, Zhan QW, Liu X, et al. Meta analysis of the association between estrogen receptor expression and gender in non-small cell lung cancer[J]. Xian Dai Zhong Liu Yi Xue, 2019, 27(23): 4205-4209. doi: 10.3969/j.issn.1672-4992.2019.23.018
[15] Tian G, Zhao X, Nie J, et al. Clinical characteristics associated with non-small-cell lung cancer harboring ALK rearrangements in Chinese patients[J]. Future Oncol, 2016, 12(10): 1243-1249. doi: 10.2217/fon.15.361
[16] 黄清洁, 陈天东, 陈海瑞, 等. 基于二代测序的300例非小细胞肺癌中驱动基因突变与临床病理特征关系[J]. 临床与实验病理学杂志, 2019, 35(3): 286-290. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-LSBL201903008.htm Huang QJ, Chen TD, Chen HR, et al. Relationship between driver gene mutation and clinicopathological features in 300 cases of non-small cell lung cancer based on next generation sequencing[J]. Lin Chuang Yu Shi Yan Bing Li Xue Za Zhi, 2019, 35(3): 286-290. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-LSBL201903008.htm
[17] 贺佳子, 黄清洁, 李莉, 等. 396例非小细胞肺癌EGFR, KRAS, ALK和BRAF基因突变状态及其临床病理特征[J]. 临床与病理杂志, 2020, 40(9): 2252-2258. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-WYSB202009005.htm He JZ, Huang QJ, Li L, et al. Mutation status of EGFR, KRAS, ALK and BRAF genes and their clinicopathological characteristics in 396 patients with non-small cell lung cancer[J]. Lin Chuang Yu Bing Li Za Zhi, 2020, 40(9): 2252-2258. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-WYSB202009005.htm
[18] 王勇, 冯佳, 钱粒, 等. 非小细胞肺癌中ALK阳性病例临床病理特征分析[J]. 交通医学, 2019, 33(6): 568-571. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-JTYX201906008.htm Wang Y, Feng J, Qian L, et al. Analysis of clinicopathological features of ALK positive cases of non-small cell lung cancer[J]. Jiao Tong Yi Xue, 2019, 33(6): 568-571. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-JTYX201906008.htm
[19] Wong DW, Lai-Han LE, Kam-Ting SK, et al. The EML4-ALK fusion gene is involved in various histologic types of lung cancers from nonsmokers with wild-type EGFR and KRAS[J]. Cancer, 2009, 115(8): 1723-1733. doi: 10.1002/cncr.24181
[20] Inamura K, Takeuchi K, Togashi Y, et al. EML4-ALK Fusion Is Linked to Histological Characteristics in a Subset of Lung Cancers[J]. J Thorac Oncol, 2008, 3(1): 13-17. doi: 10.1097/JTO.0b013e31815e8b60
[21] Sasaki T, Rodig SJ, Chirieac LR, et al. The biology and treatment of EML4-ALK non-small cell lung cancer[J]. Eur J Cancer, 2010, 46(10): 1773-1780. doi: 10.1016/j.ejca.2010.04.002
[22] 符萌, 冷再君, 李传应, 等. 非小细胞肺癌患者eml4-alk基因检测及eml4-alk阳性患者临床特征分析[J]. 安徽医科大学学报, 2017, 52(4): 528-533. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-YIKE201704014.htm Fu M, Leng ZJ, Li CY, et al. Detection of eml4-alk fusion gene and analysis of its clinical features in NSCLC patients with eml4-alk fusion gene[J]. Anhui Yi Ke Da Xue Xue Bao, 2017, 52(4): 528-533. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-YIKE201704014.htm
[23] 高歌, 邓立力. 非小细胞肺癌EGFR、KRAS、ALK基因突变与不同转移器官分布的相关性研究进展[J]. 中国肺癌杂志, 2018, 21(7): 536-542. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-FAIZ201807008.htm Gao G, Deng LL. Association between EGFR, ALK and KRAS GeneStatus and Synchronous Distant Organ Metastasis in Non-small Cell Lung Cancer[J]. Zhongguo Fei Ai Za Zhi, 2018, 21(7): 536-542. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-FAIZ201807008.htm
[24] Tong Y, Zhao Z, Liu B, et al. 5'/3' imbalance strategy to detect ALK fusion genes in circulating tumor RNA from patients with non-small cell lung cancer[J]. J Exp Clin Cancer Res, 2018, 37(1): 68. doi: 10.1186/s13046-018-0735-1
计量
- 文章访问数: 1642
- HTML全文浏览量: 413
- PDF下载量: 254
