Adriamycin Induced Chemoresistance of Human TNBC MDA-MB-468 Cells Through Stat3-cMyc Signal Pathway
-
摘要:目的
观察阿霉素(Adriamycin，ADM)对人三阴性乳腺癌MDA-MB-468细胞耐药性的诱导作用并探讨其机制。
方法培养人三阴性乳腺癌MDA-MB-468细胞，用不同浓度阿霉素处理细胞24 h后，MTT法检测细胞生长抑制率及细胞对阿霉素的敏感度。免疫荧光染色法检测耐药蛋白ABCG2的表达；免疫印迹法检测Stat3、p-Stat3、转录因子cMyc及耐药蛋白ABCG2的表达水平。
结果阿霉素持续刺激4周后，获得的MDA-MB-468/ADM细胞对阿霉素的敏感度明显降低，且耐药蛋白ABCG2的表达明显增加；MDA-MB-468/ADM细胞p-Stat3、cMyc及ABCG2的表达量显著增加；MDA-MB-468/ADM细胞培养液中加入WP1066后Stat3磷酸化明显抑制，cMyc及ABCG2的表达水平下调，并且MDA-MB-468/ADM细胞对阿霉素的敏感度明显增强（P < 0.05）。
结论阿霉素可以通过Stat3-cMyc途径诱导三阴性乳腺癌MDA-MB-468细胞产生耐药性。
Abstract:ObjectiveTo investigate the chemoresistance of human triple-negative breast cancer(TNBC) MDA-MB-468 cells induced by adriamycin(ADM) and the underlying mechanism.
MethodsMDA-MB-468 cells were treated with ADM at different concentrations for 24h, then MTT assay was used to detect the inhibitory rate of cell growth and the sensitivity of MDA-MB-468 cells to ADM. Immunofluorescence staining was used to detect the expression level of ABCG2 and Western blot was used to test the expression levels of phosphorylated Stat3(p-Stat3), cMyc and ABCG2.
ResultsThe sensitivity of MDA-MB-468/ADM to ADM was remarkably reduced and the expression of drug resistance protein ABCG2 was increased obviously in MDA-MB-468/ADM cells. In addition, the expressions of p-Stat3, cMyc and ABCG2 were much higher in MDA-MB-468/ADM cells than those in MDA-MB-468 cells. Interestingly, when the phosphorylation of Stat3 was inhibited by WP1066, the expressions of cMyc and ABCG2 were downregulated; furthermore, the sensitivity of MDA-MB-468/ADM cells to ADM was increased (P < 0.05).
ConclusionADM could induce the chemoresistance of human TNBC MDA-MB-468 cells through Stat3-cMyc signal pathway.
-
Key words:
- Triple-negative breast cancer(TNBC) /
- Adriamycin(ADM) /
- Chemoresistance /
- Stat3 /
- cMyc /
- ABCG2
-
0 引言
目前，化学治疗仍是三阴性乳腺癌的主要治疗方法之一，但是肿瘤细胞对化疗药物的耐药性严重影响了治疗效果，化疗药物与肿瘤细胞的接触是诱导继发性耐药的主要原因[1]。由于阿霉素是乳腺癌化学方案的常用药物[2]，本研究观察阿霉素对三阴性乳腺癌耐药性的诱导作用并探究其机制。
ATP结合盒（ABC）转运蛋白在耐药的发展中起着至关重要的作用。ATP结合盒亚家族G成员2（ATP-binding cassette, sub-family G member 2, ABCG2）能排出大量异质化合物，导致耐药，引起治疗抵抗[3]。细胞耐药性的产生及耐药蛋白的表达受多种转录因子的调控。有研究报道cMyc能够调控包括ABCG2在内的ABC转运蛋白的表达[4]。cMyc是一个多功能的转录因子，参与调节细胞对阿霉素的敏感度[5]，而cMyc的表达受其上游基因Stat3的调控。Stat3在肿瘤组织中异常激活，引发其下游靶基因cMyc转录，从而使正常细胞转化为癌细胞，并增加肿瘤细胞的耐药性[6]。因此，本研究观察阿霉素对MDA-MB-468细胞耐药性的诱导作用并探讨Stat3-cMyc通路是否介导了耐药性的发生。
1 材料与方法
1.1 细胞株、试剂、仪器
人乳腺癌MDA-MB-468细胞株购自美国标准细胞库（American type culture collections, ATCC）。本研究实验剂和仪器包括：RPMI 1640培养基（Hyclone，美国）、青霉素/链霉素（索莱宝，北京，中国）、胎牛血清（四季青，杭州，中国）、阿霉素（索莱宝，北京，中国）、RIPA裂解液/苯甲基磺酰氟（索莱宝，北京，中国）、聚偏二氟乙烯膜（Millipore，Billerica，美国）、ABCG2抗体（Abcam，Cambridge，美国）、WP1066抑制剂（Selleckchem，上海，中国）和二甲基亚砜（索莱宝，北京，中国）等。
1.2 细胞培养
人乳腺癌MDA-MB-468细胞用含10%FBS和1%青霉素/链霉素的RPMI 1640在37℃、5%CO2培养箱中培养。以不同浓度的阿霉素（0、0.05、0.1和0.5 μmol/L）孵育细胞24 h，观察并筛选最适阿霉素浓度进行后续实验。
1.3 MTT法检测
细胞以3 000个/孔的密度接种至96孔板，然后分别加入终浓度为0、0.05、0.1和0.5 μmol/L的阿霉素。24 h后，每孔加入20 μl MTT溶液（5 mg/ml）继续培养4 h，吸弃培养液，每孔加150 μl DMSO溶液，振荡15 min后测定570 nm处的吸光度（OD570）。
1.4 细胞爬片及免疫荧光染色
将盖玻片置于24孔板孔底，分别将MDA-MB-468和MDA-MB-468/ADM细胞以1×104个/孔接种，待细胞爬满盖玻片后进行免疫荧光染色。用PBS轻轻冲洗后在4%多聚甲醛中固定15 min。PBS洗涤爬片3次，山羊血清封闭1 h。将细胞用ABCG2一抗在4℃冰箱中孵育、过夜。PBS洗涤后，用二抗于37℃温育1 h。PBS洗涤细胞，用DAPI染色10 min，再次洗涤3次后滴加荧光防淬灭剂，观察免疫荧光染色并拍照。
1.5 蛋白质印迹分析
抽提各组细胞的总蛋白，利用BCA法测定总蛋白浓度，以每个泳道20 μg浓度的蛋白样品上样，经SDS-PAGE电泳后，利用半干电转化法将蛋白转移至PVDF膜上，经过封闭、一抗（稀释倍数1:1 000）孵育、TBST洗脱、HRP标记的二抗（稀释倍数1:5 000）孵育、TBST再洗脱等步骤后，用增强化学发光法检测信号及X线片曝光，并且经定影显影处理，获得清晰条带。
1.6 统计学方法
运用SPSS13.0统计软件进行分析，所有结果采用（x±s）表示，组间均数的比较采用独立t检验（双侧），P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 持续低剂量阿霉素刺激诱导MDA-MB-468细胞产生耐药性
不同浓度阿霉素作用于MDA-MB-468细胞24 h后可见0.05 μmol/L与0.1 μmol/L浓度的阿霉素未引起细胞明显的损伤，大部分细胞生长良好。当浓度增加到0.5 μmol/L时，几乎所有细胞都受损，可见大量坏死细胞；MTT法测得在0.05 μmol/L、0.1 μmol/L及0.5 μmol/L浓度下阿霉素对MDA-MB-468细胞的抑制率分别为0.14、0.20、0.38，而且阿霉素对MDA-MB-468细胞的半数最大效应浓度（concentration for 50% of maximal effect, EC50）为0.94 μmol/L（P=0.038）。综合以上结果，我们选用0.1 μmol/L的阿霉素继续进行后续研究。
用0.1 μmol/L的阿霉素持续刺激MDA-MB-468细胞4周后获得耐药细胞，命名为MDA-MB-468/ADM。MTT实验检测MDA-MB-468/ADM细胞对阿霉素敏感度，结果显示MDA-MB-468/ADM的EC50为5.2 μmol/L，较MDA-MB-468的EC50（0.94 μmol/L）显著升高（P=0.041），说明长期使用0.1 μmol/L的阿霉素后，MDA-MB-468细胞对阿霉素的敏感度显著下降，产生耐药，见图 1。
![]()
图 1 MTT测定经24h处理后的MDA-MB-468细胞与MDA-MB-468/ADM细胞对阿霉素的敏感度(x±s, n=3)Figure 1 Sensitivity of MDA-MB-468 and MDA-MB-468/ADM cells to adriamycin after 24h treatment detected by MTT assay (x±s, n=3)2.2 MDA-MB-468/ADM细胞中高表达耐药蛋白ABCG2
与正常MDA-MB-468细胞相比，MDA-MB-468/ADM细胞中代表ABCG2表达水平的红色荧光明显增多增强，见图 2A。Western blot检测结果也表明了MDA-MB-468/ADM细胞中ABCG2的高表达，见图 2B。提示用0.1 μmol/L阿霉素持续刺激后，三阴性乳腺癌MDA-MB-468细胞对阿霉素产生耐药。
![]()
图 2 MDA-MB-468/ADM细胞中耐药蛋白ABCG2的表达Figure 2 Expression of drug resistance protein ABCG2 in MDA-MB-468/ADM cellsA: Immunofluorescence staining results showed the increased expression of ABCG2 (red) in MDA-MB-468/ADM cells, staining with DAPI (blue); B: Western blot analysis results showed high expression of ABCG2 in MDA-MB-468/ADM cells (n=3, *: P < 0.05)2.3 MDA-MB-468/ADM细胞高表达p-Stat3与cMyc
为探究MDA-MB-468细胞对阿霉素产生耐药的机制，我们进一步检测了MDA-MB-468/ADM细胞中转录因子p-stat3与cMyc的表达水平，观察MDA-MB-468细胞对阿霉素耐药性的产生是否与Stat3-cMyc途径有关。Western blot结果显示，MDA-MB-468/ADM中p-Stat3与cMyc的表达均明显升高，而两组细胞中总的Stat3表达水平未见显著变化。这些结果表明Stat3的激活和cMyc表达的增多可能参与了MDA-MB-468细胞对阿霉素耐药性的产生，见图 3。
![]()
图 3 Western blot检测在MDA-MB-468和MDA-MB-468/ADM细胞中p-Stat3、Stat3及cMyc的表达(n=3, *: P < 0.05, **: P < 0.01)Figure 3 p-Stat3, Stat3 and cMyc expression in MDA-MB-468 and MDA-MB-468/ADM cells analyzed by Western blot (n=3, *: P < 0.05, **: P < 0.01)2.4 抑制Stat3活化可下调cMyc及ABCG2的表达
为进一步证明Stat3-cMyc途径在阿霉素诱导三阴性乳腺癌MDA-MB-468细胞耐药性产生中的作用，我们用Stat3磷酸化的抑制剂WP1066抑制Stat3活化，观察转录因子cMyc的表达是否受到影响。结果显示WP1066（1.25 μmol/L）作用于MDA-MB-468/ADM细胞后，磷酸化的Stat3显著降低（P=0.014），同时cMyc表达水平明显下降（P=0.044）。另外WP1066处理后MDA-MB-468/ADM细胞耐药蛋白ABCG2的表达也显著减少（P=0.000）。这些结果进一步说明阿霉素通过Stat3-cMyc途径诱导了MDA-MB-468细胞耐药性的产生，而抑制Stat3的活化后，耐药蛋白表达减少，细胞的耐药性减弱，见图 4。
![]()
图 4 Western blot检测MDA-MB-468、MDA-MB-468/ADM、MDA-MB-468/ADM/WP1066三组细胞中p-Stat3、Stat3、cMyc及ABCG2的表达Figure 4 Stat3, p-Stat3, cMyc and ABCG2 expression in MDA-MB-468, MDA-MB-468/ADM and MDA-MB-468/ADM/WP1066 cells analyzed by Western blot*: P < 0.05, **: P < 0.01 (x±s, n=3)2.5 抑制Stat3活化增强了MDA-MB-468/ADM细胞对阿霉素的敏感度
由于WP1066下调了耐药蛋白ABCG2的表达，因此我们进一步通过MTT法检测MDA-MB-468/ADM细胞对阿霉素敏感度的变化。结果显示，阿霉素对MDA-MB-468/ADM细胞的EC50为6.774 μmol/L，而在使用WP1066之后的EC50降低至1.29 μmol/L（P=0.000），这表明WP1066抑制Stat3的活化增强了MDA-MB-468/ADM细胞对阿霉素的敏感度，见图 5。
![]()
图 5 MTT法检测经36 h处理后的MDA-MB-468、MDA-MB-468/ADM、MDA-MB-468/ADM/WP 1066三组细胞对阿霉素的敏感度(x±s, n=3)Figure 5 Sensitivity of MDA-MB-468, MDA-MB-468/ADM and MDA-MB-468/ADM/WP1066 cells to adriamycin after 36h treatment detected by MTT assay (x±s, n=3)3 讨论
目前肿瘤细胞的耐药性是临床治疗的难点与研究的热点，阐明肿瘤耐药的机制可以为肿瘤的治疗提供新的治疗方向和靶点。
本研究应用低剂量阿霉素持续诱导人三阴性乳腺癌MDA-MB-468细胞，导致细胞产生耐药性，对阿霉素的敏感度显著下降，耐药蛋白ABCG2表达增高。为探究MDA-MB-468细胞对阿霉素产生耐药的机制，本实验进一步检测了MDA-MB-468/ADM细胞中转录因子p-stat3与cMyc的表达水平，观察MDA-MB-468细胞对阿霉素耐药性的产生与Stat3-cMyc途径有关。为进一步证明Stat3-cMyc途径在阿霉素诱导三阴性乳腺癌MDA-MB-468细胞耐药性产生中的作用，实验用Stat3磷酸化的抑制剂WP1066抑制Stat3活化，发现转录因子cMyc的表达也受到影响。进一步的机制研究揭示了Stat3-cMyc通路在阿霉素诱导的耐药中具有重要作用。
文献报道，Stat3信号通路与肿瘤细胞对化疗的耐药性有关[7]。Stat3的激活可以帮助癌细胞逃避由药物引起的死亡，从而诱发耐药性。Yue等[8]证明了Stat3的过度活化可以促进顺铂耐药的卵巢癌进展，相反，如果抑制Stat3信号通路则会促进耐药性癌细胞的凋亡，增加癌细胞对各种药物的敏感度。Li等[9]研究也有相似的发现，抑制Stat3信号通路后人胃癌细胞的凋亡增强，耐药性减弱。那么Stat3在三阴性乳腺癌耐药性的产生中有何作用？文献报道，乳腺癌组织中Stat3的活化增强与乳腺癌的临床分期和侵袭转移密切相关[10]。多种致癌性细胞因子与细胞膜的相应受体结合后导致Stat3与酪氨酸磷酸化通道相偶联后被激活，激活后的Stat3可在核内与特异性DNA启动子相结合，调节cMyc、Oct4、Sox2等相关基因表达[11]。作为调节多种转录因子功能的重要枢纽，Stat3有望成为肿瘤基因治疗中的有效靶点。有研究表明，在肿瘤中cMyc的表达水平与耐药性有关[4, 12-13]，cMyc能够调控ABC转运蛋白的表达水平，而ABCG2与肿瘤细胞的耐药性直接相关，但Stat3/cMyc在三阴性乳腺癌产生耐药性方面的影响及机制却未见报道。
本研究发现低浓度（0.1 μmol/L）阿霉素持续刺激使MDA-MB-468细胞对阿霉素的敏感度明显降低，MDA-MB-468/ADM细胞中p-Stat3和cMyc的表达较MDA-MB-468细胞显著增加，这些发现与上述文献中对Stat3和cMyc在肿瘤耐药性中的作用相一致。另外，刘丽等[6]在喉鳞癌细胞的研究中也揭示了Stat3-cMyc通路的重要作用，与本研究的结果相吻合。由此推测，MDA-MB-468/ADM对阿霉素耐药的机制很可能与Stat3的激活和p-Stat3介导的cMyc表达的增多有关。为进一步证明Stat3-cMyc通路在阿霉素诱导的乳腺癌耐药性中的关键作用，本实验应用WP1066抑制MDA-MB-468/ADM中Stat3的活化，发现随着p-Stat3的降低，cMyc和ABCG2的表达也相应下降，这与Granato等[14]证实抑制Stat3信号可下调cMyc的表达一致。再次MTT检测发现WP1066作用后MDA-MB-468/ADM细胞对阿霉素的敏感度显著增强，这与Li等[9]研究结果一致。
总之，本实验结果表明阿霉素可以诱导Stat3活化，上调转录因子cMyc及耐药蛋白ABCG2的表达，促进了三阴性乳腺癌MDA-MB-468细胞对阿霉素耐药性的产生。因此，抑制Stat3的表达与活化可有效逆转乳腺癌对阿霉素的耐药性，特异性靶向Stat3-cMyc途径联合化疗药物治疗有望成为一种有效治疗乳腺癌的新措施，改善乳腺癌患者的预后。
-
![]()
图 1 MTT测定经24h处理后的MDA-MB-468细胞与MDA-MB-468/ADM细胞对阿霉素的敏感度(x±s, n=3)
Figure 1 Sensitivity of MDA-MB-468 and MDA-MB-468/ADM cells to adriamycin after 24h treatment detected by MTT assay (x±s, n=3)
![]()
图 2 MDA-MB-468/ADM细胞中耐药蛋白ABCG2的表达
Figure 2 Expression of drug resistance protein ABCG2 in MDA-MB-468/ADM cells
![]()
图 3 Western blot检测在MDA-MB-468和MDA-MB-468/ADM细胞中p-Stat3、Stat3及cMyc的表达(n=3, *: P < 0.05, **: P < 0.01)
Figure 3 p-Stat3, Stat3 and cMyc expression in MDA-MB-468 and MDA-MB-468/ADM cells analyzed by Western blot (n=3, *: P < 0.05, **: P < 0.01)
![]()
图 4 Western blot检测MDA-MB-468、MDA-MB-468/ADM、MDA-MB-468/ADM/WP1066三组细胞中p-Stat3、Stat3、cMyc及ABCG2的表达
Figure 4 Stat3, p-Stat3, cMyc and ABCG2 expression in MDA-MB-468, MDA-MB-468/ADM and MDA-MB-468/ADM/WP1066 cells analyzed by Western blot
-
[1] Marta Prieto-Vila, Ryou-u Takahashi, Wataru Usuba, et al. Drug Resistance Driven by Cancer Stem Cells and Their Niche[J]. Int J Mol Sci, 2017, 18(12). E2574. doi: 10.3390/ijms18122574
[2] Huang JF, Wen CJ, Zhao GZ, et al. Overexpression of ABCB4 contributes to acquired doxorubicin resistance in breast cancer cells in vitro[J]. Cancer Chemother Pharmacol, 2018, 82(2): 199-210. doi: 10.1007/s00280-018-3603-y
[3] Ceballos MP, Rigalli JP, Cere LI, et al. ABC transporters: Regulation and association with multidrug resistance in hepatocellular carcinoma and colorectal carcinoma[J]. Curr Med Chem, 2018.[Epub ahead of print] http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29303075
[4] 张欢乐, 王萍, 陆妙珍, 等. c-Myc通过调控ATP结合盒转运蛋白表达对CD133+肠癌干细胞耐药性的影响[J].生理学报, 2016, 68(2): 171-8. http://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-SLXU201602008.htm Wang HL, Wang P, Lu MZ, et al. c-Myc regulation of ATP-binding cassette transporter reverses chemoresistance in CD133+ colon cancer stem cells[J]. Sheng Li Xue Bao, 2016, 68(2): 171-8. http://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-SLXU201602008.htm
[5] Zhang X, Ai Z, Chen J, et al. Glycometabolic adaptation mediates the insensitivity of drug-resistant K562/ADM leukaemia cells to adriamycin via the AKT-mTOR/c-Myc signalling pathway[J]. Mol Med Rep, 2017, 15(4): 1869-76. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=1035d5cbb2aa8238d445d4065ad075d4
[6] 刘丽, 王莹, 桑建中. p-Stat3及其下游靶基因c-myc在喉鳞癌组织和细胞中的表达及意义[J].临床耳鼻咽喉头颈外科杂志, 2016, 30(2): 123-5. http://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-LCEH201602009.htm Liu L, Wang Y, Sang JZ. Expression and Significance of p-Stat3 and its downstream gene c-Myc in laryngeal squamous cell carcinoma tissues and cells line[J]. Lin Chuang Er Bi Yan Hou Tou Jing Wai Ke Za Zhi, 2016, 30(2): 123-5. http://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-LCEH201602009.htm
[7] Liu X, Xiao Q, Bai X, et al. Activation of Stat3 is involved in malignancy mediated by CXCL12-CXCR4 signaling in human breast cancer[J]. Oncol Rep, 2014, 32(6): 2760-8. doi: 10.3892/or.2014.3536
[8] Yue P, Zhang X, Paladino D, et al. Hyperactive EGF receptor, Jaks and Stat3 signaling promote enhanced colony-forming ability, motility and migration of cisplatin-resistant ovarian cancer cells[J]. Oncogene, 2012, 31(18): 2309-22. doi: 10.1038/onc.2011.409
[9] Li H, Lu H, Lv M, et al. Parthenolide facilitates apoptosis and reverses drug resistance of human gastric carcinoma cells by inhibiting the Stat3 signaling pathway[J]. Oncol Lett, 2018, 15(3): 3572-9. http://europepmc.org/articles/PMC5796286/
[10] Kohsaka S, Wang L, Yachi K, et al. STAT3 inhibition overcomes temozolomide resistance in glioblastoma by downregulating MGMT expression[J]. Mol Cancer Ther, 2012, 11(6): 1289-99. doi: 10.1158/1535-7163.MCT-11-0801
[11] Huang S, Chen M, Shen Y, et al. Inhibition of activated Stat3 reverses drug resistance to chemotherapeutic agents in gastric cancer cells[J]. Cancer Lett, 2012, 315(2): 198-205. doi: 10.1016/j.canlet.2011.10.011
[12] Reyes-González JM, Armaiz-Peña GN, Mangala LS, et al. Targeting c-MYC in platinum-resistant ovarian cancer[J]. Mol Cancer Ther, 2015, 14(10): 2260-9. doi: 10.1158/1535-7163.MCT-14-0801
[13] Zuo Y, Yang D, Yu Y, et al. Niclosamide enhances the cytotoxic effect of cisplatin in cisplatin-resistant human lung cancer cells via suppression of lung resistance-related protein and c-Myc[J]. Mol Med Rep, 2018, 17(3): 3497-502. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29257330
[14] Granato M, Rizzello C, Gilardini Montani MS, et al. Quercetin induces apoptosis and autophagy in primary effusion lymphoma cells by inhibiting PI3K/AKT/mTOR and Stat3 signaling pathways[J]. J Nutr Biochem, 2017, 41: 124-36. doi: 10.1016/j.jnutbio.2016.12.011
下载:
计量
- 文章访问数: 2024
- HTML全文浏览量: 305
- PDF下载量: 389
