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恩度微量泵入与腹腔注射联合表阿霉素治疗小鼠乳腺癌的疗效对比观察

吴皎, 杨慧勤, 刘蓉, 杨润祥

吴皎, 杨慧勤, 刘蓉, 杨润祥. 恩度微量泵入与腹腔注射联合表阿霉素治疗小鼠乳腺癌的疗效对比观察[J]. 肿瘤防治研究, 2018, 45(7): 463-467. DOI: 10.3971/j.issn.1000-8578.2018.17.1349
引用本文: 吴皎, 杨慧勤, 刘蓉, 杨润祥. 恩度微量泵入与腹腔注射联合表阿霉素治疗小鼠乳腺癌的疗效对比观察[J]. 肿瘤防治研究, 2018, 45(7): 463-467. DOI: 10.3971/j.issn.1000-8578.2018.17.1349
WU Jiao, YANG Huiqin, LIU Rong, YANG Runxiang. Effect of Two Administration Methods of Endostar Combined with Epirubicin on Breast Cancer in Mice[J]. Cancer Research on Prevention and Treatment, 2018, 45(7): 463-467. DOI: 10.3971/j.issn.1000-8578.2018.17.1349
Citation: WU Jiao, YANG Huiqin, LIU Rong, YANG Runxiang. Effect of Two Administration Methods of Endostar Combined with Epirubicin on Breast Cancer in Mice[J]. Cancer Research on Prevention and Treatment, 2018, 45(7): 463-467. DOI: 10.3971/j.issn.1000-8578.2018.17.1349

恩度微量泵入与腹腔注射联合表阿霉素治疗小鼠乳腺癌的疗效对比观察

基金项目: 

国家自然科学基金 81360393

国家自然科学基金 81560432

CSCO血管靶向治疗研究基金 S-S2015-001

详细信息
    作者简介:

    吴皎(1992-),女,硕士在读,主要从事肿瘤化疗研究

    通讯作者:

    杨润祥,E-mail: 13888876721@163.com

  • 中图分类号: R73-36+1;R737.9

Effect of Two Administration Methods of Endostar Combined with Epirubicin on Breast Cancer in Mice

More Information
  • 摘要:
    目的 

    比较恩度微量泵入或腹腔注射联合表阿霉素对小鼠乳腺癌的疗效。

    方法 

    建立乳腺癌4T1细胞的BALB/c小鼠移植瘤模型,随机分为空白对照组(0.9%NaCl, ip)、标准对照组(EPI, ip)及4个实验组:(1)rhES(ip)+EPI(ip);(2)rhES(pump)+EPI(ip);(3)rhES(ip);(4)rhES(pump)。监测肿瘤大小和小鼠体重,治疗第10天行小动物活体成像,治疗结束后采用免疫组织化学法测定瘤内血小板-内皮细胞黏附分子(CD31)的表达。

    结果 

    恩度单药持续微量泵入(7 mg/(kg.d))疗效显著优于腹腔注射(P=0.01);恩度持续微量泵入联合表阿霉素与双药联合腹腔注射疗效相当(P > 0.05),但前者不良反应略低。

    结论 

    恩度微量泵入联合表阿霉素治疗小鼠乳腺癌疗效与传统静脉滴注相当,为开展乳腺癌患者携泵回家治疗的可能性提供了实验依据,但还需要进一步的临床试验加以证实。

     

    Abstract:
    Objective 

    To compare the effect of endostar via micro pump or intraperitoneal injection combined with epirubicin on breast cancer in mice.

    Methods 

    We established the BALB/c mice breast cancer model by orthotopically inoculating 4T1 cells, then they were randomly divided into six groups: blank group(0.9%NaCl, ip), standard control group(EPI, ip) and four experimental groups:(1) rhES(ip)+EPI(ip); (2) rhES(pump)+EPI(ip); (3) rhES(ip); (4) rhES(pump). We monitored tumor xenografts volume, mice weight and drug adverse events every two days until the termination of treatment; We also detected their bioluminescence activity on day 10; after the treatment, mices were sacrificed, tumor xenografts were completely removed and we detected platelet endothelial cell adhesion molecule-1 (PECAM-1/CD31) expression level in tumor tissues by IHC.

    Results 

    The effect of endostar via micro pump(7 mg/(kg.d)) was better than intraperitoneal injection on breast cancer in mice(P=0.01). The effect of endostar via micro pump combined with epirubicin was equivalent with intraperitoneal injection of two drugs(P > 0.05), and the adverse events in former groups were reduced.

    Conclusion 

    The effect of endostar via micro pump combined with epirubicin is equivalent with intraperitoneal injection of two drugs, which provides an experimental basis for the possibility of breast cancer patients carrying endostar micro pump at home, however, more clinical evidence are needed.

     

  • 最新研究显示前列腺癌在美国是男性发病率最高的恶性肿瘤,死亡率排名第二[1]。在中国,前列腺癌发病率呈逐年增长趋势,增长率排名第一,且预后往往不好[2]。骨转移在晚期前列腺癌患者中非常常见,常引起高钙血症,病理性骨折,脊髓压迫等并发症,甚至可导致永久性瘫痪和肢体功能丧失,目前骨转移治疗主要是姑息治疗,仅能改善患者的生活质量[3-4]。因此我们需要深入研究前列腺癌骨转移发生的分子机制,开发有效的治疗方法来提高前列腺癌骨转移患者总体生存时间和生活质量。

    前列腺癌细胞与骨微环境中的细胞相互作用促进了肿瘤细胞的生长和骨定植[5]。Stephan Paget 1889年提出了著名的“种子和土壤”学说:肿瘤转移依赖于肿瘤细胞(作为“种子”)和宿主微环境(作为“土壤”)之间相互作用的结果[6]。尽管这是经典的理论,但它仍不能全面的解释器官特异性转移的分子机制。肿瘤细胞在骨髓中定植需要经过多个步骤,包括血管的生成、局部转移和侵袭,脱离原发灶进入血管,然后从血管溢出,在骨髓中适应、存活和定植。肿瘤细胞可通过分泌一些因子或蛋白来调节骨髓微环境或转移前微环境的形成从而有利于肿瘤的转移,见图 1。本文主要对以上各个阶段主要参与的分子及其发生的机制进行综述。

    图  1  前列腺癌骨转移模式图
    Figure  1  Schematic of prostate cancer bone metastasis process

    肿瘤转移首先需要从原发病灶中脱落,包括细胞外基质降解,肿瘤细胞发生上皮间质转化,进入血液循环或淋巴循环,在这一过程中,其中有两类分子发挥重要作用。

    整合素是细胞表面糖蛋白的一类大家族,它能与黏附分子形成异二聚体,并绑定很多细胞外基质成分,调节细胞骨架的结构来维持细胞的形状以利于细胞的迁移。不同的整合素在前列腺癌侵袭转移中的作用不同,有些已成为抗前列腺癌转移的靶标。如Integrin α2β1是胶原蛋白的受体,研究发现其与前列腺癌的侵袭性密切相关,靶向Integrin α2β1开发的抑制剂(如G. sinensis)在体外通过失活Integrin α2β1的表达抑制了由胶原介导的PC3细胞的迁移和黏附[7]

    在原发肿瘤微环境中,肿瘤上皮细胞被成纤维细胞、巨噬细胞、周皮细胞和各种细胞外基质所包围。这些肿瘤微环境产生各种细胞因子:肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor, TNFα)、转化生长因子-β(transforming growth factor-β, TGF-β)、Wnt和低氧诱导因子-1(hypoxia inducible factor-1, HIF-1α)等促进EMT的发生。在EMT过程中,E-Cadherin表达降低,细胞紧密连接作用减弱,离开基底层有利于细胞的转移。同时重要的间质标志物如波形蛋白(Vimentin)、转录因子Snail、Slug、Twist 1、锌指增强绑定蛋白1(zinc-finger-enhancer binding protein 1, ZEB1)和锌指增强绑定蛋白2(zinc-finger-enhancer binding protein 2, ZEB2)在EMT过程中表达增加,导致细胞的运动能力增强[8]

    肿瘤细胞从原发部位脱落,侵入到细胞外基质(extracellular matrix, ECM),与基底膜(basement membrane, BM)及细胞间质中一些分子结合,并激活细胞合成、分泌各种降解酶类(如基质金属蛋白酶,丝氨酸蛋白酶等),协助肿瘤细胞穿过ECM进入血管,然后在某些炎性反应细胞或细胞因子等的作用下运行并穿过血管壁外渗到继发部位,从而使肿瘤细胞获得了侵袭和转移的能力。

    前列腺癌侵袭需要部分降解细胞外基质,很多研究显示高MMPs的表达与前列腺癌患者不良预后相关[9-10]。Nabha等[11]研究发现PC3细胞和骨髓间充质干细胞混合培养能够增加PC3细胞中MMP-12的含量,RNAi干扰PC3细胞MMP-12的表达,能够通过减少骨内Ⅰ型胶原的降解从而降低了PC3细胞的侵袭能力。

    纤溶酶原激活物是一种主要的丝氨酸蛋白酶,能降解细胞外基质。Urokinase-type plasminogen activator-Urokinase-type plasminogen activator receptor(uPA-uPAR)的结合能使纤溶酶原转变成纤溶酶,从而降解细胞外基质。通过对前列腺癌样本进行分析发现,上调uPA和uPAR表达与高的肿瘤分级密切相关[12]。Dong等[13]研究显示,将稳定转染uPA siRNA的PC3细胞注射入胎骨中,随后将这些骨植入免疫缺陷小鼠体内,结果发现uPA siRNA组相较于对照组显著的减少了肿瘤负荷和骨降解,表明肿瘤来源的uPA对前列腺肿瘤在骨中的生长起重要作用。

    炎性反应可以通过多种途径影响前列腺的病理生理学改变:包括产生活性氧导致突变形成、产生一些促进肿瘤生长和抑制抗肿瘤免疫的因子,以及通过促进免疫细胞进入肿瘤从而促进肿瘤的转移[14-15]

    调节性T细胞(Treg)被认为是介导肿瘤进程的一类细胞。Treg是CD4+的T细胞,它能抑制效应性T细胞的活性。前列腺癌患者相较于健康人外周血中,CD4+CD25high这类Treg具有更强的免疫抑制功能[16]。除了Tregs,另外一类CD4+ T细胞—Th17细胞,也能够影响前列腺癌的进程和免疫治疗的反应。Th17细胞能够产生促炎因子IL17从而吸引和激活粒细胞和单核细胞[17]

    巨噬细胞在肿瘤的发生发展中发挥着重要作用。在前列腺癌中,增加的肿瘤相关巨噬细胞(tumor-associated macrophage, TAM)可通过激活CCL22-CCR4轴促进前列腺癌转移[18]。尽管TAM在前列腺癌中已明确是增加的,但其促进前列腺癌进程的具体分子机制仍然不清楚。

    骨基质是由95%的Ⅰ型胶原和5%的非胶原蛋白、蛋白多糖组成[19]。骨髓中的细胞不仅包括成骨细胞、破骨细胞,还包括造血细胞、脂肪细胞和免疫细胞。骨基质和骨髓细胞分泌的大量生长因子构成了骨微环境复杂的空间结构和前列腺癌细胞生长所需的肥沃土壤。

    在转移的后期,肿瘤细胞需要从血管中溢出,进入靶器官定植,肿瘤细胞首先需要黏附到内皮细胞上。研究显示前列腺癌细胞上的E选择素(E-selectin)配体与骨髓内皮细胞上的E-selectin结合,导致黏附[20]。前列腺癌细胞表达CD44与血管细胞黏附分子1(vascular cell adhesion molecule 1, VCAM-1)结合,促进了肿瘤细胞与内皮细胞的黏附,且IL-17、胰岛素和胰岛素样生长因子1(insulin-like growth factor 1, IGF-1)能增强这种黏附作用[21]。另外,播散的肿瘤细胞(disseminated tumor cells, DTCs)表达Annexin Ⅱ受体(Annexin Ⅱ receptor, Annexin ⅡR)与表达Annexin Ⅱ的成骨细胞结合,促进肿瘤细胞骨转移[22]。此外,趋化因子在前列腺癌细胞归巢过程中也发挥着重要作用。表达趋化因子配体16(CXC ligand 16, CXCL16)的前列腺癌细胞通过与骨髓间充质干细胞(bone marrow mesenchymal stem cells, BMSCs)上相应受体CXCR6的结合,诱导BMSCs转变成肿瘤相关的成纤维细胞,产生更多的CXCL12,从而促进肿瘤细胞播散到骨[23]。CXCR4和它的配体CXCL12/SDF1通过归巢信号趋化肿瘤细胞到骨髓微环境中[24]。靶向CXCR4药理学的抑制剂(Plerixafor和CTE9908)能够抑制PC3细胞在骨内的定植生长[25]。这些发现说明抑制骨髓微环境的细胞与肿瘤细胞的相互作用可能成为治疗前列腺癌骨转移的有效方法。

    DTCs在骨髓中存活需要适应新的环境,逃避免疫系统并长期保持休眠状态(约1~10年)。富含半胱氨酸的酸性分泌蛋白(secreted protein acidic and rich in cysteine, SPARC)通过上调骨形成蛋白7(bone morphogenetic protein 7, BMP7)诱导前列腺癌细胞的休眠和复发[26]。研究发现注射BMP7的裸鼠,前列腺癌细胞在骨内的增殖变慢[27]。另外,生长停止特异性蛋白6(growth arrest specific 6, GAS6)是一种络氨酸激酶受体家族成员的配体,它在骨骼中的表达水平也影响了前列腺癌细胞的休眠[28]

    肿瘤细胞在骨髓中定植必须脱离休眠状态,骨形成和骨吸收释放和激活存活和生长促进因子导致骨转移的发生。整合素除在肿瘤转移的早期外,还在前列腺癌的骨髓定植中发挥着重要的作用。如前列腺癌细胞表达Integrin α2β1,能够黏附和转移到骨基质上,从而利于肿瘤细胞定植到骨髓中[29]。Cadherin-11,也称为成骨细胞来源的cadherin,高表达在人前列腺癌骨转移组织和前列腺癌骨转移细胞系中[30]。在PC3细胞中使用shRNA干扰Cadherin-11的表达,导致了小鼠骨转移的发生率明显降低[30]。核因子κB受体活化因子配体(receptor activator for nuclear factor-κB ligand, RANKL)在骨重建中是一个重要介导分子。前列腺癌DTCs通过表达甲状旁腺激素相关蛋白(parathyroid hormone-related protein, PTHrP)增强了成骨细胞表达RANKL,从而促进破骨细胞形成,也为DTCs在骨内的转移生长创造了空间[31]。抗RANKL的人源单克隆抗体已经显示能作为一种选择性靶向破骨细胞的药物,通过阻断RANK和RANKL的相互作用来抑制破骨细胞的活性[32]。目前,靶向治疗前列腺癌骨转移主要的策略是:靶向肿瘤细胞高表达基因以降低其与肿瘤微环境细胞的相互作用或者是靶向宿主微环境中的细胞功能。表 1列举了一些调节前列腺癌骨转移重要的蛋白质。

    表  1  调节前列腺癌骨转移重要的蛋白质
    Table  1  Key proteins for regulation of prostate cancer bone metastasis
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    骨转移仍然是引起前列腺癌患者死亡的主要原因。科学家一直在努力寻找有效的治疗手段,然而由于骨髓微环境的复杂性和异质性,直至今天,尚无有效的药物能从根本上治疗前列腺癌骨转移,双磷酸盐仅能在一定程度上限制骨的降解和缓减骨痛,但不能明显改善患者总生存期,总体疗效仍不尽如人意。Ra223是目前唯一一个得到FDA批准用于治疗去势抵抗型前列腺癌骨转移的放射性同位素,它通过模拟钙,在骨基质区域或成骨性骨转移病灶处与羟基磷灰石结合,然后释放高能量的α粒子诱发骨转移细胞DNA损伤和细胞死亡[39]。但其价格昂贵,也不能从根本上解决和防止前列腺癌骨转移的发生。只有我们了解和掌握前列腺癌骨转移发展的过程和分子机制,特别是肿瘤细胞和微环境是如何相互对话和发挥作用,才能更好地发现和验证靶向骨转移的药物。如针对骨转移细胞休眠的特性,我们可以通过抑制骨转移细胞再激活的过程,让肿瘤细胞一直处于休眠状态,达到控制转移的目的;另外肿瘤细胞需要与微环境中的细胞相互作用促进其骨髓定植,因此可以通过抑制剂靶向它们相互作用的蛋白,阻断它们连接的纽带,从而达到抑制骨转移的目的。未来会有更多前列腺癌骨转移潜在的治疗靶点被发现,将会进一步揭示前列腺癌的生物学特征,为前列腺癌的治疗带来更多的手段,最终使患者获益。

  • 图  1   不同治疗方案对移植瘤的治疗效果

    Figure  1   Therapeutic effects of different therapeutic schedules on tumor xenografts

    图  2   小动物活体成像评估移植瘤生长情况(治疗后第10天)

    Figure  2   Tumor xenografts growth evaluated by small animal bioluminescent imaging (day10th after treatment)

    图  3   各治疗方案对小鼠体重的影响(第一个疗程治疗结束时)

    Figure  3   Comparison of weight loss in mice among different groups (at the end of the first course of treatment)

    图  4   免疫组织化学检测各治疗方案下肿瘤组织内CD31的表达(×200)

    Figure  4   Immunohistochemical staining of CD31 expression in different groups (×200)

    图  5   各治疗方案对肿瘤转移的影响(治疗结束时)

    Figure  5   Effects of different therapeutic schedules on tumor metastasis (at the end of treatment)

  • [1]

    Chen W, Zheng R, Baade PD, et al. Cancer statistics in China, 2015[J]. CA Cancer J Clin, 2016, 66(2): 115-32. doi: 10.3322/caac.21338

    [2]

    Ribatti D, Nico B, Ruggieri S, et al. Angiogenesis and Antiangiogenesis in Triple-Negative Breast cancer[J]. Transl Oncol, 2016, 9(5): 453-7. doi: 10.1016/j.tranon.2016.07.002

    [3]

    Baronzio G, Parmar G, Baronzio M. Overview of Methods for Overcoming Hindrance to Drug Delivery to Tumors, with Special Attention to Tumor Interstitial Fluid[J]. Front Oncol, 2015, 5: 165. http://cn.bing.com/academic/profile?id=e083da8ddb12438cf93d76241b8b9df2&encoded=0&v=paper_preview&mkt=zh-cn

    [4]

    Azzi S, Hebda JK, Gavard J. Vascular permeability and drug delivery in cancers[J]. Front Oncol, 2013, 3: 211. http://cn.bing.com/academic/profile?id=66f3f32cbc7c25e5deac6d25d4a32002&encoded=0&v=paper_preview&mkt=zh-cn

    [5]

    Dong X, Zhao X, Xiao T, et al. Endostar, a recombined humanized endostatin, inhibits lymphangiogenesis and lymphatic metastasis of Lewis lung carcinoma xenograft in mice[J]. Thorac Cardiovasc Surg, 2011, 59(3): 133-6. doi: 10.1055/s-0030-1250152

    [6]

    Li XQ, Shang BY, Wang DC, et al. Endostar, a modified recombinant human endostatin, exhibits synergistic effects with dexamethasone on angiogenesis and hepatoma growth[J]. Cancer Lett, 2011, 301(2): 212-20. doi: 10.1016/j.canlet.2010.12.004

    [7] 张弛, 邓文英, 李宁, 等.恩度不同给药途径联合TP方案治疗进展期卵巢癌的临床观察[J].肿瘤防治研究, 2016, 43(1): 54-7. http://www.zlfzyj.com/CN/abstract/abstract8682.shtml

    Zhang C, Deng WY, Li N, et al. Different administration ways of endostar combined with TP regimen on advanced ovarian cancer patients[J]. Zhong Liu Fang Zhi Yan Jiu, 2016, 43(1): 54-7. http://www.zlfzyj.com/CN/abstract/abstract8682.shtml

    [8] 孙翠平. 恩度不同给药方式联合化疗治疗晚期胃癌的临床研究[D]. 青海大学, 2016.

    Sun CP. Clinical observation of endostar deliveried by different ways combined with chemotherapy in treatment of advanced gastric cancer[D]. Qinghai Da Xue, 2016.

    [9] 苏进, 许新华, 史克志, 等.持续静脉泵注恩度联合SOX方案治疗原发性肝癌[J].实用医学杂志, 2016, 32(17): 2908-11. doi: 10.3969/j.issn.1006-5725.2016.17.037

    Su J, Xu XH, Shi KZ, et al. Clinical efficacy of combination therapy with continuous intravenous pumping of Endostar and SOX regimen in advanced primary carcinoma of the liver[J]. Shi Yong Yi Xue Za Zhi, 2016, 32(17): 2908-11. doi: 10.3969/j.issn.1006-5725.2016.17.037

    [10] 任国秀, 雍定丽.持续静脉泵注恩度联合化疗治疗晚期非小细胞肺癌不良反应的临床观察及护理[J].齐齐哈尔医学院学报, 2016, 37(26): 3336-8. http://edu.wanfangdata.com.cn/Periodical/Detail/jkyj201406049

    Ren GX, Yong DL. Clinical observation and nursing care of continuous intravenous infusion of Endostar combined with chemotherapyin treatment of advanced non-small cell lung cancer[J]. Qiqihar Yi Xue Yuan Xue Bao, 2016, 37(26): 3336-8. http://edu.wanfangdata.com.cn/Periodical/Detail/jkyj201406049

    [11] 苏乔, 林颖, 李雯雯, 等.乳腺癌BALB/c小鼠生物发光活体成像和小动物18F-FDG PET/CT成像的比较研究[J].中华普通外科学文献(电子版), 2017, 11(1): 18-22. http://kns.cnki.net/KCMS/detail/detail.aspx?filename=zhpd201701007&dbname=CJFD&dbcode=CJFQ

    Su Q, Lin Y, Li WW, et al. Comparison between bioluminescent imaging and small-animal 18F-FDG PET/CT in BALB/c mice with breast cancer[J]. Zhonghua Pu Tong Wai Ke Xue Wen Xian(Dian Zi Ban), 2017, 11(1): 18-22. http://kns.cnki.net/KCMS/detail/detail.aspx?filename=zhpd201701007&dbname=CJFD&dbcode=CJFQ

    [12]

    Folkman J. Tumor angiogenesis: therapeutic implications[J]. N Engl J Med, 1971, 285(21): 1182-6. doi: 10.1056/NEJM197111182852108

    [13] 程丽, 张幸平, 杨鸿捷, 等.重组人血管内皮抑素联合NP方案对人乳腺癌裸鼠移植瘤作用的实验研究[J].重庆医科大学学报, 2011, 36(5): 546-9. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=cqykdxxb201105010

    Cheng L, Zhang XP, Yang HJ, et al. Experimental study of recombinant human endostatin combined with NVB-Cisplatin on human breast cancer xenografts in nude mice[J]. Chongqing Yi Ke Da Xue Xue Bao, 2011, 36(5): 546-9. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=cqykdxxb201105010

    [14] 饶明月, 张幸平, 程丽, 等.小剂量紫杉醇联合重组人血管内皮抑素对乳腺癌MCF-7细胞抑制作用的实验研究[J].重庆医科大学学报, 2011, 36(11): 1335-8. doi: 10.3969/j.issn.0253-3626.2011.11.016

    Rao MY, Zhang XP, Cheng L, et al. Inhibitory effect of low-dose paclitaxel combined with recombinant human endostatin on breast cancer MCF-7 cell line[J]. Chongqing Yi Ke Da Xue Xue Bao, 2011, 36(11): 1335-8. doi: 10.3969/j.issn.0253-3626.2011.11.016

    [15] 刘文稚, 李孟考, 陈祥明.重组人血管内皮抑素联合人参皂甙Rg3抑制裸鼠乳腺癌新生血管的动物实验研究[J].中华临床医师杂志, 2015, 9(6): 947-51. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=zhlcyszz201506015

    Liu WZ, Li MK, Chen XM. The animal research of endostar combined with Rg3 on inhibiting angiogenesis in xenograft model of breast cancer[J]. Zhonghua Lin Chuang Yi Shi Za Zhi, 2015, 9(6): 947-51. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=zhlcyszz201506015

    [16] 王晓利, 王晓成, 徐晓明, 等.联合应用重组人血管内皮抑素与紫杉醇对乳腺癌细胞株SK-BR-3诱导凋亡作用研究[J].河北医学, 2017, 23(7): 1091-4. http://www.doc88.com/p-141638927233.html

    Wang XL, Wang XC, Xu XM, et al. Apoptosis induced by recombinant human endostatin and paclitaxel in breast cancer cell line SK-BR-3[J]. Hebei Yi Xue, 2017, 23(7): 1091-4. http://www.doc88.com/p-141638927233.html

    [17] 王彦荣, 李沛, 席妍, 等.重组人血管内皮抑素联合NP方案治疗晚期乳腺癌临床观察[J].中外医疗, 2013, 26: 5-6, 8. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=hgzy201326003

    Wang YR, Li P, Xi Y, et al. Clinical Observation of the Therapeutic Effect of Rh-endostatin (Edostar, YH-16) Combined with Vinorelbine and Cisplatin on Terminal Breast Cancer[J]. Zhong Wai Yi Liao, 2013, 26: 5-6, 8. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=hgzy201326003

    [18] 张宁玲, 李秋梅.重组人血管内皮抑素联合吉西他滨顺铂方案治疗转移性三阴性乳腺癌的疗效观察[J].中国肿瘤临床与康复, 2014, 21(4): 436-9. http://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTotal-SDYB201303021.htm

    Zhang NL, Li QM. Observation on the effects of recombinant human endostatin combined with GP regimen in the treatment ofmetastatic three negative breast cancer[J]. Zhongguo Zhong Liu Lin Chuang Yu Kang Fu, 2014, 21(4): 436-9. http://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTotal-SDYB201303021.htm

    [19]

    Chen J, Yao Q, Li D, et al. Neoadjuvant rh-endostatin, docetaxel and epirubicin for breast cancer: efficacy and safety in a prospective, randomized, phase Ⅱ study[J]. BMC Cancer, 2013, 13: 248. doi: 10.1186/1471-2407-13-248

    [20]

    O' reilly MS, Boehm T, Shing Y, et al. Endostatin: an endogenous inhibitor of angiogenesis and tumor growth[J]. Cell, 1997, 88(2): 277-85. doi: 10.1016/S0092-8674(00)81848-6

    [21]

    Kisker O, Becker CM, Prox D, et al. Continuous administration of endostatin by intraperitoneally implanted osmotic pump improves the efficacy and potency of therapy in a mouse xenograft tumor model[J]. Cancer Res, 2001, 61(20): 7669-74. http://cn.bing.com/academic/profile?id=8854a81add4ff51a5a7c0d3760a20a7d&encoded=0&v=paper_preview&mkt=zh-cn

    [22]

    Li N, Zheng D, Wei X, et al. Effects of recombinant human endostatin and its synergy with cisplatin on circulating endothelial cells and tumor vascular normalization in A549 xenograft murine model[J]. J Cancer Res Clin Oncol, 2012, 138(7): 1131-44. doi: 10.1007/s00432-012-1189-z

图(5)
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出版历程
  • 收稿日期:  2017-10-23
  • 修回日期:  2018-02-26
  • 网络出版日期:  2024-01-12
  • 刊出日期:  2018-07-24

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